| 摘要 | 第4-5页 |
| ABSTRACT | 第6-11页 |
| 第一章 文献综述 | 第11-24页 |
| 1.1 手性化合物简介 | 第11-15页 |
| 1.1.1 手性与手性药物 | 第11-13页 |
| 1.1.2 手性化合物的获取方法 | 第13-15页 |
| 1.2 脂肪酶在生物催化中的应用 | 第15-17页 |
| 1.2.1 脂肪酶简介 | 第15-16页 |
| 1.2.2 脂肪酶的结构与催化机理 | 第16-17页 |
| 1.2.3 脂肪酶的手性拆分机理 | 第17页 |
| 1.3 阿伐他汀手性中间体研究现状 | 第17-22页 |
| 1.3.1 手性池反应 | 第18-19页 |
| 1.3.2 不对称合成 | 第19-21页 |
| 1.3.3 外消旋CHBE的手性拆分 | 第21-22页 |
| 1.4 课题思路 | 第22-24页 |
| 第二章 产酶菌株的筛选 | 第24-41页 |
| 2.1 分析方法的建立 | 第25-29页 |
| 2.1.1 实验材料 | 第25页 |
| 2.1.2 水解反应过程 | 第25-26页 |
| 2.1.3 分析方法 | 第26-28页 |
| 2.1.4 数据处理 | 第28-29页 |
| 2.2 菌种筛选 | 第29-39页 |
| 2.2.1 菌种初筛 | 第29-30页 |
| 2.2.2 菌种复筛 | 第30-34页 |
| 2.2.3 菌种鉴定 | 第34-39页 |
| 2.3 本章小结 | 第39-41页 |
| 第三章 苏云金芽孢杆菌M2发酵产酶条件优化 | 第41-52页 |
| 3.1 实验材料 | 第41-42页 |
| 3.1.1 菌株 | 第41页 |
| 3.1.2 培养基 | 第41页 |
| 3.1.3 原料与试剂 | 第41页 |
| 3.1.4 仪器与与型号 | 第41-42页 |
| 3.2 实验方法 | 第42-43页 |
| 3.2.1 发酵制备菌体 | 第42页 |
| 3.2.2 配制滴定用NaOH溶液 | 第42页 |
| 3.2.3 脂肪酶活定义和测定方法 | 第42-43页 |
| 3.2.4 生物量的测定 | 第43页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第43-51页 |
| 3.3.1 培养基成分优化 | 第43-47页 |
| 3.3.2 发酵条件优化 | 第47-51页 |
| 3.4 本章小结 | 第51-52页 |
| 第四章 4-氯-3-羟基丁酸乙酯选择性水解反应条件的研究 | 第52-65页 |
| 4.1 实验材料 | 第53页 |
| 4.1.1 菌株 | 第53页 |
| 4.1.2 培养基 | 第53页 |
| 4.1.3 仪器 | 第53页 |
| 4.2 水解反应体系的研究 | 第53-58页 |
| 4.2.1 发酵制备菌体 | 第54页 |
| 4.2.2 缓冲液类型对生物催化剂的影响 | 第54-55页 |
| 4.2.3 缓冲液pH对生物催化剂的影响 | 第55-56页 |
| 4.2.4 菌体干燥方法的选择 | 第56-58页 |
| 4.3 水解反应条件的优化 | 第58-64页 |
| 4.3.1 酶促水解反应时间进程 | 第58-59页 |
| 4.3.2 反应温度对水解效果的影响 | 第59-60页 |
| 4.3.3 底物浓度对水解效果的影响 | 第60-62页 |
| 4.3.4 菌粉添加量对水解效果的影响 | 第62页 |
| 4.3.5 优化后的反应时间曲线 | 第62-63页 |
| 4.3.6 菌体重复利用的批次反应结果 | 第63-64页 |
| 4.4 本章小结 | 第64-65页 |
| 第五章 结论与建议 | 第65-67页 |
| 5.1 结论 | 第65-66页 |
| 5.2 建议 | 第66-67页 |
| 参考文献 | 第67-71页 |
| 致谢 | 第71-72页 |
| 攻读硕士学位期间发表的学术论文 | 第72页 |