第一篇 文献综述 | 第8-31页 |
第一章 L-丙氨酸概述 | 第8-19页 |
1.1 L-丙氨酸的理化性质 | 第8页 |
1.2 L-丙氨酸的用途 | 第8-10页 |
1.2.1 生物学功能 | 第8页 |
1.2.2 工业用途 | 第8-10页 |
1.3 L-丙氨酸的生产方法 | 第10-17页 |
1.3.1 提取法 | 第10页 |
1.3.2 化学合成法 | 第10-11页 |
1.3.3 拆分法 | 第11-13页 |
1.3.4 发酵法 | 第13-15页 |
1.3.5 生物酶转化法 | 第15-17页 |
1.4 小结 | 第17-19页 |
第二章 固定化细胞方法简介 | 第19-31页 |
2.1 前言 | 第19页 |
2.2 固定化细胞的性质及优点 | 第19-20页 |
2.2.1 固定化酶的优点 | 第19页 |
2.2.2 固定化细胞的优点 | 第19-20页 |
2.3 固定化细胞的种类 | 第20-21页 |
2.4 固定化细胞的制备方法 | 第21-28页 |
2.4.1 无载体的固定化方法 | 第21-22页 |
2.4.2 吸附法 | 第22-24页 |
2.4.3 包埋法 | 第24-28页 |
2.4.4 交联发 | 第28页 |
2.5 固定化细胞生物反应器的类型及其应用 | 第28-31页 |
2.5.1 填充床反应器 | 第28-29页 |
2.5.2 连续搅拌罐反应器 | 第29页 |
2.5.3 流化床反应器 | 第29页 |
2.5.4 空心纤维反应器 | 第29-30页 |
2.5.5 转盘式反应器 | 第30页 |
2.5.6 其它类型反应器 | 第30页 |
2.5.7 固定化细胞系统反应器类型的选择 | 第30-31页 |
第二篇 实验结果与讨论 | 第31-81页 |
第三章 发酵条件的优化 | 第31-60页 |
3.1 材料与方法 | 第31-33页 |
3.1.1 出发菌株 | 第31页 |
3.1.2 培养基 | 第31页 |
3.1.3 培养方法 | 第31页 |
3.1.4 主要仪器及设备 | 第31-32页 |
3.1.5 分析方法 | 第32-33页 |
3.2 碳源对细胞酶活力的影响 | 第33-41页 |
3.2.1 谷氨酸浓度对L-天冬氨酸-β-脱羧酶活力的影响 | 第33-35页 |
3.2.2 蔗糖浓度对L-天冬氨酸-β-脱羧酶活力的影响 | 第35-36页 |
3.2.3 富马酸浓度对L-天冬氨酸-β-脱羧酶活力的影响 | 第36-38页 |
3.2.4 柠檬酸浓度对L-天冬氨酸-β-脱羧酶活力的影响 | 第38-39页 |
3.2.5 葡萄糖浓度对L-天冬氨酸-β-脱羧酶活力的影响 | 第39-41页 |
3.2.6 小结 | 第41页 |
3.3 有机氮源浓度对L-天冬氨酸-β-脱羧酶活力的影响 | 第41-49页 |
3.3.1 蛋白胨浓度对L-天冬氨酸-β-脱羧酶活力的影响 | 第42-43页 |
3.3.2 黄豆饼粉浓度对L-天冬氨酸-β-脱羧酶活力的影响 | 第43-44页 |
3.3.3 酵母抽提物浓度对L-天冬氨酸-β-脱羧酶活力的影响 | 第44-45页 |
3.3.4 牛肉膏浓度对L-天冬氨酸-β-脱羧酶活力的影响 | 第45-47页 |
3.3.5 玉米浆浓度对L-天冬氨酸-β-脱羧酶活力的影响 | 第47-48页 |
3.3.6 小结 | 第48-49页 |
3.4 无机氮源浓度对L-天冬氨酸-β-脱羧酶活力的影响 | 第49-53页 |
3.4.1 硫酸铵浓度对L-天冬氨酸-β-脱羧酶活力的影响 | 第49-50页 |
3.4.2 氨水浓度对L-天冬氨酸-β-脱羧酶活力的影响 | 第50页 |
3.4.3 氯化铵浓度对L-天冬氨酸-β-脱羧酶活力的影响 | 第50-52页 |
3.4.4 硝酸铵浓度对L-天冬氨酸-β-脱羧酶活力的影响 | 第52-53页 |
3.4.5 小结 | 第53页 |
3.5 其它因素对L-天冬氨酸-β-脱羧酶活力的影响 | 第53-60页 |
3.5.1 培养温度对L-天冬氨酸-β-脱羧酶活力的影响 | 第53-55页 |
3.5.2 培养基初始pH值对L-天冬氨酸-β-脱羧酶活力的影响 | 第55-57页 |
3.5.3 培养时间对L-天冬氨酸-β-脱羧酶活力的影响 | 第57-59页 |
3.5.4 小结 | 第59-60页 |
第四章 固定化细胞的制备及性质 | 第60-80页 |
4.1 材料与方法 | 第60-63页 |
4.1.1 出发菌株 | 第60页 |
4.1.2 培养基及培养条件 | 第60-61页 |
4.1.3 固定化材料 | 第61页 |
4.1.4 主要仪器及设备 | 第61页 |
4.1.5 溶液 | 第61页 |
4.1.6 分析方法 | 第61-62页 |
4.1.7 细胞制备方法 | 第62页 |
4.1.8 固定化细胞制备方法 | 第62-63页 |
4.2 固定化方法的选择 | 第63-65页 |
4.2.1 用不同方法制备的固定化细胞的比较 | 第63-64页 |
4.2.2 不同硬化剂对Κ-卡拉胶包埋法的影响 | 第64页 |
4.2.3 不同硬化剂对固定化细胞酶活力稳定性的影响 | 第64-65页 |
4.2.4 小结 | 第65页 |
4.3 固定化条件的研究 | 第65-68页 |
4.3.1 Κ-卡拉胶浓度对固定化细胞酶活力的影响 | 第65-66页 |
4.3.2 细胞浓度对固定化细胞酶活力的影响 | 第66-67页 |
4.3.3 硬化剂A浓度对固定化细胞酶活力的影响 | 第67-68页 |
4.3.4 硬化剂B浓度对固定化细胞酶活力的影响 | 第68页 |
4.3.5 小结 | 第68页 |
4.4 固定化细胞的性质 | 第68-75页 |
4.4.1 酶促反应的最适pH值 | 第69页 |
4.4.2 酶促反应的最适温度 | 第69-70页 |
4.4.3 酶的稳定性 | 第70-71页 |
4.4.4 底物活化对固定化细胞酶活力的影响 | 第71-73页 |
4.4.5 固定化酶的最适底物浓度 | 第73-74页 |
4.4.6 固定化细胞贮藏稳定性 | 第74页 |
4.4.7 固定化细胞酶活力的半衰期测定 | 第74-75页 |
4.5 利用填充床反应器实现L-丙氨酸的酶法合成 | 第75-77页 |
4.6 成品L-丙氨酸的鉴定 | 第77-78页 |
4.7 讨论 | 第78-80页 |
4.7.1 固定化细胞的制备方法 | 第78页 |
4.7.2 固定化细胞酶性质的研究 | 第78-80页 |
第五章 结论与展望 | 第80-81页 |
5.1 结论 | 第80页 |
5.2 展望 | 第80-81页 |
参考文献 | 第81-85页 |
致谢 | 第85页 |