| 摘要 | 第3-5页 |
| abstract | 第5-6页 |
| 第一章 绪论 | 第11-22页 |
| 1.1 有机农药的分类及应用 | 第12-14页 |
| 1.1.1 有机农药的分类 | 第12-13页 |
| 1.1.2 三种常见有机农药的作用和限量标准情况 | 第13-14页 |
| 1.2 环境和食品中农药残留检测方法研究进展 | 第14-20页 |
| 1.2.1 样品前处理技术 | 第14-17页 |
| 1.2.1.1 固相萃取(Solid Phase Extraction) | 第14页 |
| 1.2.1.2 超临界流体萃取（Supercritical Fluid Extraction） | 第14-15页 |
| 1.2.1.3 加速溶剂萃取（Accelerated Solvent Extraction） | 第15页 |
| 1.2.1.4 液液萃取（Liquid-Liquid Extraction） | 第15页 |
| 1.2.1.5 固相微萃取（Solid-Phase Microextraction） | 第15-16页 |
| 1.2.1.6 基质固相分散萃取（Matrix Solid-Phase Dispersion） | 第16页 |
| 1.2.1.7 微波辅助萃取（Microwave Assisted Extraction） | 第16页 |
| 1.2.1.8 超声波提取（Ultrasonic Extraction） | 第16-17页 |
| 1.2.2 农药分析技术 | 第17-20页 |
| 1.2.2.1 气相色谱法（Gas Chromatography, GC）及气相色谱-质谱联用技术的联用 | 第17页 |
| 1.2.2.2 高效液相色谱法（High Performance Liquid Chromatography,HPLC）及高效液相色谱法与其它技术的联用 | 第17-18页 |
| 1.2.2.3 毛细管电泳（Capillary Electrophoresis） | 第18页 |
| 1.2.2.4 免疫分析法（Immunoassay Method） | 第18-19页 |
| 1.2.2.5 光谱分析法（Spectroscopy ） | 第19-20页 |
| 1.2.3 基于金纳米粒子的比色法 | 第20页 |
| 1.3 本论文的研究意义及主要研究内容 | 第20-22页 |
| 1.3.1 研究意义 | 第20-21页 |
| 1.3.2 研究内容 | 第21-22页 |
| 第二章 对氨基苯甲酸功能化的金纳米可视化检测杀螟丹 | 第22-32页 |
| 2.1 引言 | 第22-23页 |
| 2.2 实验部分 | 第23-24页 |
| 2.2.1 主要试剂与仪器 | 第23页 |
| 2.2.2 PABA- AuNPs的合成 | 第23-24页 |
| 2.2.2.1 AuNPs的合成 | 第23-24页 |
| 2.2.2.2 PABA- AuNPs的合成 | 第24页 |
| 2.2.3 水样品的前处理 | 第24页 |
| 2.2.4 比色法检测杀螟丹 | 第24页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第24-31页 |
| 2.3.1 材料表征 | 第24-26页 |
| 2.3.1.1 金纳米溶液的表征 | 第24-25页 |
| 2.3.1.2 PABA-AuNPs的表征 | 第25-26页 |
| 2.3.2 杀螟丹测定条件的影响 | 第26-27页 |
| 2.3.2.1 PABA浓度的影响 | 第26页 |
| 2.3.2.2 溶液pH和反应时间的影响 | 第26-27页 |
| 2.3.3 PABA-AuNPs对杀螟丹的选择性识别 | 第27-29页 |
| 2.3.4 PABA-AuNPs溶液的稳定性 | 第29页 |
| 2.3.5 分析方法的校正曲线及检测限 | 第29-30页 |
| 2.3.6 湖水和农田水中的检测 | 第30-31页 |
| 2.4 本章小结 | 第31-32页 |
| 第三章 基于对氨基苯甲酰胺功能化的金纳米可视化检测杀草强 | 第32-41页 |
| 3.1 引言 | 第32-33页 |
| 3.2 实验部分 | 第33-34页 |
| 3.2.1 主要试剂与仪器 | 第33页 |
| 3.2.2 AMIDE- AuNPs的合成 | 第33页 |
| 3.2.2.1 AuNPs的合成 | 第33页 |
| 3.2.2.2 AMIDE- AuNPs的合成 | 第33页 |
| 3.2.3 环境水样的前处理 | 第33页 |
| 3.2.4 检测方法的建立 | 第33-34页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第34-40页 |
| 3.3.1 材料表征 | 第34-35页 |
| 3.3.1.1 金纳米溶液的表征 | 第34页 |
| 3.3.1.2 AMIDE-AuNPs的表征 | 第34-35页 |
| 3.3.2 AMIDE-AuNPs对杀草强的选择性识别 | 第35-36页 |
| 3.3.3 杀草强测定条件的影响 | 第36-37页 |
| 3.3.3.1 AMIDE浓度的影响 | 第36-37页 |
| 3.3.3.2 溶液pH和反应时间的影响 | 第37页 |
| 3.3.4 干扰实验 | 第37-38页 |
| 3.3.4.1 阴阳离子对杀草强检测体系的影响 | 第37-38页 |
| 3.3.4.2 其他农药对杀草强检测体系的影响 | 第38页 |
| 3.3.5 分析应用 | 第38-40页 |
| 3.3.5.1 分析方法的工作曲线及检测限 | 第38-39页 |
| 3.3.5.2 样品检测 | 第39-40页 |
| 3.4 本章小结 | 第40-41页 |
| 第四章 基于多克隆抗体的间接竞争ELISA方法测定氯吡脲 | 第41-61页 |
| 4.1 引言 | 第41-42页 |
| 4.2 实验试剂与仪器 | 第42-43页 |
| 4.2.1 实验试剂 | 第42页 |
| 4.2.2 仪器与设备 | 第42-43页 |
| 4.3 实验方法 | 第43-47页 |
| 4.3.1 氯吡脲人工抗原的制备 | 第43-44页 |
| 4.3.1.1 氯吡脲人工半抗原的制备 | 第43页 |
| 4.3.1.2 EDC法制备氯吡脲人工全抗原 | 第43-44页 |
| 4.3.2 氯吡脲亲和层析柱制备 | 第44-45页 |
| 4.3.3 抗氯吡脲多克隆抗体的制备 | 第45页 |
| 4.3.3.1 免疫新西兰大白兔 | 第45页 |
| 4.3.3.2 大白兔血清抗体效价及抗体特异性测定 | 第45页 |
| 4.3.4 基于氯吡脲多克隆抗体的间接竞争酶联免疫方法建立 | 第45-47页 |
| 4.3.4.1 方正滴定法测定最佳抗原包被浓度 | 第45-46页 |
| 4.3.4.2 抗氯吡脲多克隆抗体IC50的测定 | 第46页 |
| 4.3.4.3 ELISA条件的优化 | 第46-47页 |
| 4.3.4.4 抗氯吡脲间接竞争ELISA标准曲线的建立 | 第47页 |
| 4.4 结果与讨论 | 第47-59页 |
| 4.4.1 氯吡脲半抗原的结构鉴定 | 第47-51页 |
| 4.4.1.1 元素分析仪对半抗原的最简式鉴定 | 第47-48页 |
| 4.4.1.2 液质联用仪对半抗原的相对分子质量鉴定 | 第48-49页 |
| 4.4.1.3 核磁共振对半抗原的分子结构式鉴定 | 第49-51页 |
| 4.4.2 氯吡脲人工全抗原的鉴定 | 第51-54页 |
| 4.4.2.1 紫外光谱法 | 第51-52页 |
| 4.4.2.2 基质辅助激光解吸电离-飞行时间质谱法（MALDI-TOFMS） | 第52-54页 |
| 4.4.3 抗氯吡脲多克隆抗体的制备结果 | 第54页 |
| 4.4.4 方正滴定法测定最佳抗原包被浓度 | 第54-55页 |
| 4.4.5 抗氯吡脲多克隆抗体IC50的测定 | 第55页 |
| 4.4.6 ELISA条件的优化 | 第55-57页 |
| 4.4.7 抗氯吡脲间接竞争ELISA标准曲线的建立 | 第57-58页 |
| 4.4.8 交叉反应 | 第58-59页 |
| 4.4.9 方法准确度和精密度 | 第59页 |
| 4.5 结论 | 第59-61页 |
| 致谢 | 第61-62页 |
| 参考文献 | 第62-69页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第69页 |
