| 中文摘要 | 第5-8页 |
| Abstract | 第8-9页 |
| 英文缩略语词表 | 第10-12页 |
| 前言 | 第12-15页 |
| 第一部分 ALK 融合基因在肾透明细胞癌中的表达 | 第15-31页 |
| 1. 实验材料 | 第15-17页 |
| 2. 实验方法 | 第17-24页 |
| 3. 实验结果 | 第24-29页 |
| 3.1 IHC 检测肾透明细胞癌中 ALK 表达情况 | 第24-25页 |
| 3.2 RT-PCR 检测 4 例 IHC ALK 表达阳性的肾透明细胞癌标本中 ALK mRNA 表达情况 | 第25-26页 |
| 3.3 5'-RACE 确定 ALK 重排形成的融合基因为 EML4-ALK Variant122 | 第26-27页 |
| 3.4 FISH 检测 EML4-ALK 融合基因 | 第27-29页 |
| 4. 实验讨论 | 第29-31页 |
| 第二部分 EML4-ALK 融合基因慢病毒表达载体的构建、鉴定及在 HK-2 细胞中的稳定表达 | 第31-45页 |
| 1. 实验材料 | 第31-33页 |
| 2. 实验方法 | 第33-39页 |
| 3. 实验结果 | 第39-43页 |
| 3.1 病毒载体的构建 | 第39-40页 |
| 3.2 嘌呤霉素对 HK-2 细胞的最小致死浓度 | 第40页 |
| 3.3 病毒的滴度 | 第40页 |
| 3.4 Real-time quantitative PCR 检测稳转细胞株中 ALK mRNA 表达情况 | 第40-41页 |
| 3.5 Western Blotting 检测稳转细胞株中 ALK 蛋白表达情况 | 第41页 |
| 3.6 流式检测第 10 代和 20 代稳转细胞株中 ALK 表达 | 第41-43页 |
| 4. 实验讨论 | 第43-45页 |
| 第三部分 EML4-ALK 融合基因表达对 HK-2 细胞功能学的研究 | 第45-53页 |
| 1. 实验材料 | 第45-46页 |
| 2. 实验方法 | 第46-47页 |
| 3. 实验结果 | 第47-50页 |
| 3.1 细胞生长曲线和克隆形成实验 | 第47-48页 |
| 3.2 ALK 抑制剂 TAE684 生长抑制实验 | 第48-49页 |
| 3.3 裸鼠皮下成瘤实验 | 第49-50页 |
| 4．实验讨论 | 第50-53页 |
| 参考文献 | 第53-58页 |
| 综述 | 第58-67页 |
| 参考文献 | 第62-67页 |
| 致谢 | 第67-68页 |
