| 综述 | 第14-39页 |
| 一、自由基损伤在IDDM 发病及慢性合并症发生发展中的作用 | 第14-23页 |
| 二、参与IDDM 胰岛β细胞自身免疫损害的细胞因子 | 第23-27页 |
| 三、抗氧化微量营养素防治糖尿病的细胞分子作用 | 第27-39页 |
| 实验一 STZ 诱导C57BL 小鼠IDDM 模型优化的研究 | 第39-48页 |
| 一、小剂量多次注射STZ 诱导雌性C57BL 小鼠IDDM 模型的研究 | 第39-42页 |
| 1 实验材料 | 第39-40页 |
| 1.1 实验动物 | 第39页 |
| 1.2 主要试剂及来源 | 第39页 |
| 1.3 实验试剂配制 | 第39-40页 |
| 1.4 主要仪器 | 第40页 |
| 2 实验方法 | 第40页 |
| 2.1 实验分组 | 第40页 |
| 2.2 模型制备方法 | 第40页 |
| 2.3 观察指标 | 第40页 |
| 3 结果 | 第40-42页 |
| 3.1 IDDM 小鼠一般状态 | 第40-41页 |
| 3.2 IDDM 小鼠血糖测试结果 | 第41-42页 |
| 3.3 IDDM 组小鼠模型成功率及死亡率 | 第42页 |
| 二、MLDS 诱导C57bL 雄性小鼠IDDM 模型的研究 | 第42-44页 |
| 1 实验材料 | 第42页 |
| 1.1 实验动物 | 第42页 |
| 1.2 主要试剂及来源 | 第42页 |
| 1.3 实验试剂配制 | 第42页 |
| 1.4 主要仪器 | 第42页 |
| 2 实验方法 | 第42页 |
| 2.1 实验分组 | 第42页 |
| 2.2 模型制备方法 | 第42页 |
| 2.3 观察指标 | 第42页 |
| 3 结果 | 第42-44页 |
| 3.1 IDDM 小鼠一般状态 | 第42-43页 |
| 3.2 IDDM 小鼠血糖测试结果 | 第43-44页 |
| 3.3 IDDM 组小鼠模型成功率及存活率 | 第44页 |
| 三、MLDS 诱导雄性C57bL 小鼠IDDM 模型再研究 | 第44-46页 |
| 1 实验材料 | 第44页 |
| 1.1 实验动物 | 第44页 |
| 1.2 主要试剂及来源 | 第44页 |
| 1.3 实验试剂配制 | 第44页 |
| 1.4 主要仪器 | 第44页 |
| 2 实验方法 | 第44页 |
| 2.1 实验分组 | 第44页 |
| 2.2 模型制备方法 | 第44页 |
| 2.3 观察指标 | 第44页 |
| 3 结果 | 第44-46页 |
| 3.1 IDDM 小鼠一般状态 | 第44-45页 |
| 3.2 IDDM 小鼠血糖测试结果 | 第45页 |
| 3.3 IDDM 组小鼠模型成功率及死亡率 | 第45-46页 |
| 四、讨论 | 第46-48页 |
| 实验二 抗氧化微量营养素对IDDM 小鼠胰岛形态结构的保护作用及对Insulin 基因转录与翻译水平表达的影响 | 第48-70页 |
| 一、AM 对IDDM 小鼠胰岛形态结构保护作用的定量分析研究 | 第48-53页 |
| 1 实验材料 | 第48-49页 |
| 1.1 实验动物 | 第48页 |
| 1.2 主要试剂 | 第48页 |
| 1.3 主要仪器 | 第48-49页 |
| 1.4 主要试剂配制 | 第49页 |
| 2 实验方法 | 第49-50页 |
| 2.1 糖尿病模型制备方法 | 第49页 |
| 2.2 实验动物分组及补充抗氧化微量营养素的方法 | 第49-50页 |
| 2.3 观察指标 | 第50页 |
| 2.4 统计分析 | 第50页 |
| 3 结果 | 第50-53页 |
| 3.1 AM对IDDM小鼠一般状态的影响 | 第50-51页 |
| 3.2 AM对IDDM小鼠血糖水平的影响 | 第51-52页 |
| 3.3 小鼠胰腺组织HE 染色切片定量分析的结果 | 第52-53页 |
| 二、 AM对IDDM小鼠Insulin基因转录与翻译水平的调控作用研究 | 第53-64页 |
| 1 材料 | 第53-54页 |
| 1.1 实验动物 | 第53页 |
| 1.2 主要试剂 | 第53页 |
| 1.3 主要仪器 | 第53-54页 |
| 1.4 实验试剂配制 | 第54页 |
| 2 实验方法 | 第54-60页 |
| 2.1 IDDM 模型制备方法 | 第54页 |
| 2.2 实验动物分组、各组 AM 补充剂量及方法 | 第54-55页 |
| 2.3 观察指标 | 第55-59页 |
| 2.4 统计分析 | 第59-60页 |
| 3 结果 | 第60-64页 |
| 3.1 AM 对 IDDM 小鼠一般状态的影响 | 第60页 |
| 3.2 AM对IDDM小鼠血糖水平的影响 | 第60-61页 |
| 3.3 AM 对 IDDM 小鼠胰岛 Insulin 基因翻译水平表达的影响定量分析结果 | 第61-62页 |
| 3.4 AM 对 IDDM 小鼠胰岛 Insulin mRNA 转录水平表达的影响定量分析结果 | 第62-63页 |
| 3.5 AM 对IDDM 小鼠胰腺Insulin mRNA 转录水平表达的影响半定量RT-PCR结果 | 第63-64页 |
| 三 A、M 对IDDM 小鼠胰岛内分泌细胞超微结构影响的研究 | 第64-66页 |
| 1 材料 | 第64-65页 |
| 1.1 实验动物 | 第64-65页 |
| 1.2 主要试剂 | 第65页 |
| 1.3 主要试剂配制 | 第65页 |
| 1.4 主要仪器 | 第65页 |
| 2 实验方法 | 第65页 |
| 2.1 IDDM 模型制备方法 | 第65页 |
| 2.2 实验动物分组、各组 AM 补充剂量及方法 | 第65页 |
| 2.3 观察指标 | 第65页 |
| 3 结果 | 第65-66页 |
| 四、讨论 | 第66-70页 |
| 实验三 抗氧化微量营养素胰岛细胞保护作用细胞分子机制研究 | 第70-96页 |
| 一、AM 对IDDM 小鼠外周血淋巴细胞IL-2、IL-4、IL-10、TNF-α、IFN-γ表达调控的研究 | 第70-82页 |
| 1 实验材料 | 第70-74页 |
| 1.1 实验动物 | 第70页 |
| 1.2 主要试剂及来源 | 第70-71页 |
| 1.3 实验试剂配制 | 第71-74页 |
| 1.4 主要仪器 | 第74页 |
| 2 实验方法 | 第74-79页 |
| 2.1 模型制备方法 | 第74页 |
| 2.2 实验分组及各组抗氧化微量营养素补充剂量和方法 | 第74页 |
| 2.3 观察指标 | 第74-79页 |
| 2.4 统计方法 | 第79页 |
| 3 结果 | 第79-82页 |
| 3.1 AM 对IDDM 小鼠外周血淋巴细胞IL-2、TNF-α、IFN-γ基因表达的影响 | 第79页 |
| 3.2 AM 对IDDM 小鼠外周血淋巴细胞IL-4、IL-10 基因表达的影响 | 第79-81页 |
| 3.3 AM 对IDDM 小鼠脾脏淋巴细胞IL-4、TNF-α基因表达的影响 | 第81页 |
| 3.4 原位杂交方法检测IDDM 小鼠脾脏TNF-αmRNA 表达的结果 | 第81-82页 |
| 二、 AM 对IDDM 小鼠外周血淋巴细胞IL-4 I、L-6、IL-12 表达调控的研究 | 第82-84页 |
| 1 实验材料 | 第82页 |
| 1.1 实验动物 | 第82页 |
| 1.2 主要试剂及来源 | 第82页 |
| 1.3 主要试剂配制 | 第82页 |
| 1.4 主要仪器 | 第82页 |
| 2 实验方法 | 第82-83页 |
| 2.1 IDDM 模型制备方法 | 第82页 |
| 2.2 实验动物分组、各组 AM 补充剂量及方法 | 第82-83页 |
| 2.3 观察指标 | 第83页 |
| 2.4 统计分析 | 第83页 |
| 3 结果 | 第83-84页 |
| 三、AM 对IDDM 小鼠心、脑、肾、肝组织氧化应激状态影响的研究 | 第84-91页 |
| 1 实验材料 | 第84-86页 |
| 1.1 实验动物 | 第84页 |
| 1.2 主要试剂及来源 | 第84页 |
| 1.3 主要试剂配制 | 第84-86页 |
| 1.4 主要仪器 | 第86页 |
| 2 实验方法 | 第86-89页 |
| 2.1 模型制备方法 | 第86页 |
| 2.2 实验分组及各组抗氧化微量营养素补充剂量和方法 | 第86页 |
| 2.3 观察指标 | 第86-89页 |
| 2.4 统计分析 | 第89页 |
| 3 结果 | 第89-91页 |
| 3.1 IDDM 小鼠心、脑、肾、肝GSH-Px 活力的检测结果 | 第89-90页 |
| 3.2 IDDM小鼠心、脑、肾、肝SOD活力的检测结果 | 第90页 |
| 3.3 心、脑、肾、肝MDA 含量测定的结果 | 第90-91页 |
| 四、讨论 | 第91-96页 |
| 结论 | 第96-98页 |
| 附图 | 第98-104页 |
| 参考文献 | 第104-120页 |
| 攻博期间发表的文章 | 第120-121页 |
| 致谢 | 第121-122页 |
| 论文摘要(中文) | 第122-126页 |
| 论文摘要(英文) | 第126页 |
