| 摘要 | 第5-8页 |
| ABSTRACT | 第8-9页 |
| 第一章 绪论 | 第13-29页 |
| 1.1 多环芳烃简介 | 第13-14页 |
| 1.2 水环境中多环芳烃 | 第14-16页 |
| 1.2.1 水体中的PAHs | 第14-15页 |
| 1.2.2 底泥中PAHs | 第15-16页 |
| 1.3 PAHs的生物降解 | 第16-17页 |
| 1.4 低氧环境 | 第17-18页 |
| 1.5 多环芳烃降解的研究现状 | 第18-25页 |
| 1.5.1 PAHs降解影响因素 | 第18-19页 |
| 1.5.2 PAHs的好氧降解 | 第19-21页 |
| 1.5.3 PAHs的厌氧降解 | 第21-24页 |
| 1.5.4 PAHs的低氧降解 | 第24-25页 |
| 1.6 研究创新性及意义 | 第25页 |
| 1.7 已有研究基础 | 第25-26页 |
| 1.7.1 PAHs污染现状调查及评价 | 第25-26页 |
| 1.7.2 PAHs低氧降解菌筛选与鉴定 | 第26页 |
| 1.7.3 降解菌对PAHs的降解效率 | 第26页 |
| 1.8 研究内容与方法 | 第26-28页 |
| 1.8.1 对多环芳烃降解菌进行鉴定 | 第27页 |
| 1.8.2 不同电子受体对克雷伯氏菌降解菲的影响 | 第27页 |
| 1.8.3 克雷伯氏菌Klebsiella sp. ZS1对菲的降解途径 | 第27-28页 |
| 1.9 技术路线图 | 第28-29页 |
| 第二章 多环芳烃降解菌的鉴定 | 第29-37页 |
| 2.1.实验材料 | 第29页 |
| 2.1.1 菌株 | 第29页 |
| 2.1.2 实验试剂 | 第29页 |
| 2.1.3 主要实验仪器 | 第29页 |
| 2.2 实验方法 | 第29-31页 |
| 2.2.1 细胞的形态观察 | 第29-30页 |
| 2.2.2 细菌DNA的提取 | 第30页 |
| 2.2.3 PCR扩增 | 第30页 |
| 2.2.4 16Sr DNA测序及同源性分析 | 第30-31页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第31-36页 |
| 2.3.1 降解菌形态特征 | 第31-33页 |
| 2.3.2 16S rDNA鉴定结果 | 第33-34页 |
| 2.3.3 系统进化树分析 | 第34-36页 |
| 2.4 本章小结 | 第36-37页 |
| 第三章 低氧条件下不同电子受体对克雷伯氏菌（Klebsiella sp. ZS1）降解菲的影响 | 第37-45页 |
| 3.1 实验材料 | 第37-38页 |
| 3.1.1 实验菌株及培养基 | 第37-38页 |
| 3.1.2 实验仪器 | 第38页 |
| 3.2 实验方法 | 第38-39页 |
| 3.2.1 菌种活化 | 第38页 |
| 3.2.2 接种培养 | 第38页 |
| 3.2.3 取样及分析 | 第38-39页 |
| 3.2.4 统计分析方法 | 第39页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第39-44页 |
| 3.3.1 不同电子受体的消耗率 | 第39-41页 |
| 3.3.2 不同电子受体对菲降解的影响 | 第41-43页 |
| 3.3.3 不同电子受体对降解菌生长的影响 | 第43-44页 |
| 3.4 本章小结 | 第44-45页 |
| 第四章 菲低氧降解中间产物分析及降解途径探讨 | 第45-60页 |
| 4.1 实验材料 | 第45-46页 |
| 4.1.1 降解菌及培养基 | 第45-46页 |
| 4.1.2 实验试剂 | 第46页 |
| 4.1.3 实验仪器 | 第46页 |
| 4.2 实验方法 | 第46-47页 |
| 4.2.1 菌种活化 | 第46页 |
| 4.2.2 接种培养 | 第46页 |
| 4.2.3 取样 | 第46页 |
| 4.2.4 萃取浓缩 | 第46-47页 |
| 4.2.5 GC—MS分析 | 第47页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第47-59页 |
| 4.4 本章小结 | 第59-60页 |
| 第五章 结论与展望 | 第60-62页 |
| 5.1 结论 | 第60页 |
| 5.2 展望 | 第60-62页 |
| 参考文献 | 第62-72页 |
| 硕士期间发表论文 | 第72-73页 |
| 致谢 | 第73页 |