| 致谢 | 第4-6页 |
| 摘要 | 第6-8页 |
| Abstract | 第8-9页 |
| 全文缩写表 | 第11-16页 |
| 引言 | 第16-19页 |
| 第一章 壳聚糖纳米粒与吐温80修饰壳聚糖纳米粒的制备、表征 | 第19-25页 |
| 1.1 仪器与试剂 | 第19-20页 |
| 1.1.1 仪器 | 第19页 |
| 1.1.2 试剂 | 第19-20页 |
| 1.2 实验方法 | 第20页 |
| 1.2.1 壳聚糖纳米粒(CS-NPs)制备的处方优化 | 第20页 |
| 1.2.2 吐温80修饰壳聚糖纳米粒(TmCS-NPs)制备 | 第20页 |
| 1.2.3 CS-NPs及TmCS-NPs的表征：粒径、电位、透射电镜 | 第20页 |
| 1.3 实验结果与讨论 | 第20-23页 |
| 1.3.1 壳聚糖纳米粒(CS-NPs)制备的处方优化 | 第20-21页 |
| 1.3.2 CS-NPs及TmCS-NPs的表征：粒径、电位、透射电镜 | 第21-23页 |
| 1.4 本章小结 | 第23-25页 |
| 第二章 基于大鼠模型的壳聚糖纳米载体的神经毒性评价 | 第25-41页 |
| 2.1 仪器与试剂 | 第25-26页 |
| 2.1.1 仪器 | 第25页 |
| 2.1.2 试剂及实验动物 | 第25-26页 |
| 2.2 实验方法 | 第26-29页 |
| 2.2.1 罗丹明B异硫氰酸酯(RBITC)标记壳聚糖及表征 | 第26-27页 |
| 2.2.2 罗丹明B异硫氰酸酯标记壳聚糖纳米粒的制备及表征 | 第27页 |
| 2.2.3 RBITC标记CS-NPs及TmCS-NPs的体内分布情况 | 第27页 |
| 2.2.4 氧化应激标志物检测与大鼠体重变化 | 第27-28页 |
| 2.2.5 组织病理学切片检测 | 第28-29页 |
| 2.2.6 GFAP、NeuN免疫组化染色 | 第29页 |
| 2.3 实验结果与讨论 | 第29-40页 |
| 2.3.1 罗丹明B异硫氰酸酯(RBITC)标记壳聚糖及表征 | 第29-30页 |
| 2.3.2 罗丹明B异硫氰酸酯标记壳聚糖纳米粒的制备及表征 | 第30-31页 |
| 2.3.3 RBITC标记CS-NPs及TmCS-NPs的体内分布情况 | 第31-33页 |
| 2.3.4 氧化应激标志物检测与大鼠体重变化 | 第33-36页 |
| 2.3.5 组织病理学切片检测 | 第36-37页 |
| 2.3.6 GFAP、NeuN免疫组化染色 | 第37-40页 |
| 2.4 本章小结 | 第40-41页 |
| 第三章 基于斑马鱼胚胎模型的壳聚糖纳米载体的发育神经毒性评价 | 第41-65页 |
| 3.1 仪器与试剂 | 第43页 |
| 3.1.1 仪器 | 第43页 |
| 3.1.2 试剂及实验动物 | 第43页 |
| 3.2 实验方法 | 第43-49页 |
| 3.2.1 斑马鱼的养殖与鱼卵采集 | 第43-44页 |
| 3.2.2 胚胎一般毒性试验 | 第44页 |
| 3.2.3 神经行为学评价 | 第44-47页 |
| 3.2.4 活性氧检测 | 第47页 |
| 3.2.5 凋亡检测 | 第47-48页 |
| 3.2.6 织病理学切片检测 | 第48页 |
| 3.2.7 TEM观察幼鱼肌肉形态 | 第48页 |
| 3.2.8 斑马鱼整体胚胎免疫组化染色 | 第48-49页 |
| 3.3 实验结果与讨论 | 第49-64页 |
| 3.3.1 胚胎一般毒性试验 | 第49-52页 |
| 3.3.2 神经行为学试验 | 第52-56页 |
| 3.3.3 活性氧检测 | 第56-57页 |
| 3.3.4 凋亡检测 | 第57-58页 |
| 3.3.5 组织病理学切片检测 | 第58-60页 |
| 3.3.6 TEM观察幼鱼肌肉形态 | 第60-62页 |
| 3.3.7 斑马鱼整体胚胎的免疫组化染色 | 第62-64页 |
| 3.4 本章小结 | 第64-65页 |
| 全文总结 | 第65-67页 |
| 参考文献 | 第67-73页 |
| 综述 | 第73-89页 |
| 参考文献 | 第82-89页 |
| 作者简历 | 第89页 |
