| 摘要 | 第4-6页 |
| ABSTRCT | 第6-7页 |
| 第一章 绪论 | 第10-25页 |
| 1.1 前言 | 第10-11页 |
| 1.2 骨组织工程血管化的研究方法 | 第11-15页 |
| 1.2.1 细胞联合培养技术 | 第11-12页 |
| 1.2.2 成骨基因转染 | 第12-13页 |
| 1.2.3 显微外科重建技术 | 第13-14页 |
| 1.2.4 负载生长因子 | 第14-15页 |
| 1.3 小分子药物在血管化中的研究 | 第15-18页 |
| 1.4 水凝胶用于血管再生的研究 | 第18-22页 |
| 1.4.1 水凝胶联合诱导因子调节血管生成 | 第19-20页 |
| 1.4.2 水凝胶通过性能的改变调节血管生成 | 第20-22页 |
| 1.5 课题研究的意义和研究内容 | 第22-25页 |
| 1.5.1 课题的提出 | 第22页 |
| 1.5.2 本课题研究内容 | 第22-23页 |
| 1.5.3 本课题研究的创新点 | 第23-25页 |
| 第二章 透明质酸/壳聚糖天然基水凝胶及纳米复合水凝胶的制备 | 第25-37页 |
| 2.1 前言 | 第25-26页 |
| 2.2 实验部分 | 第26-30页 |
| 2.2.1 材料与仪器 | 第26-27页 |
| 2.2.2 实验部分 | 第27-30页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第30-36页 |
| 2.3.1 透明质酸的氧化开环机理 | 第30页 |
| 2.3.2 氧化透明质酸的结构表征和氧化度计算 | 第30-32页 |
| 2.3.3 MSNs-ALG/CHI的合成与表征 | 第32-34页 |
| 2.3.4 MSNs-ALG/CHI载药率的测定 | 第34-35页 |
| 2.3.5 水凝胶微观形貌观察 | 第35-36页 |
| 2.4 本章小结 | 第36-37页 |
| 第三章 纳米复合水凝胶的理化性能与生物相容性评价 | 第37-53页 |
| 3.1 前言 | 第37-38页 |
| 3.2 实验内容 | 第38-43页 |
| 3.2.1 材料与仪器 | 第38-39页 |
| 3.2.2 溶胀性能测试 | 第39-40页 |
| 3.2.3 流变性能测试 | 第40页 |
| 3.2.4 压缩性能测试 | 第40页 |
| 3.2.5 体外降解性能测试 | 第40页 |
| 3.2.6 体外药物缓释测试 | 第40-41页 |
| 3.2.7 体外生物相容性的研究 | 第41-43页 |
| 3.2.8 统计学分析 | 第43页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第43-52页 |
| 3.3.1 纯水凝胶理化性能的研究 | 第43-45页 |
| 3.3.2 纯水凝胶细胞相容性评价 | 第45-46页 |
| 3.3.3 复合水凝胶物理性能的评价 | 第46-48页 |
| 3.3.4 纳米复合水凝胶体外药物释放和体外降解性能 | 第48-49页 |
| 3.3.5 纳米复合水凝胶的生物相容性表征 | 第49-52页 |
| 3.4 本章小结 | 第52-53页 |
| 第四章 载 1-磷酸鞘氨醇复合水凝胶的促血管化性能评价 | 第53-63页 |
| 4.1 前言 | 第53-54页 |
| 4.2 实验内容 | 第54-57页 |
| 4.2.1 材料与仪器 | 第54-55页 |
| 4.2.2 细胞迁移实验 | 第55页 |
| 4.2.3 鸡胚尿囊绒毛膜实验 | 第55-56页 |
| 4.2.4 小鼠腹部皮下包埋实验 | 第56-57页 |
| 4.2.5 纳米复合水凝胶与大孔支架复合后的促血管化评价 | 第57页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第57-62页 |
| 4.3.1 细胞迁移评价 | 第57-58页 |
| 4.3.2 鸡胚尿囊绒毛膜血管化评价 | 第58-59页 |
| 4.3.3 载药水凝胶在小鼠体内血管化评价 | 第59-60页 |
| 4.3.4 载药水凝胶与大孔支架复合后的血管化评价 | 第60-62页 |
| 4.4 本章小结 | 第62-63页 |
| 第五章 结论与展望 | 第63-65页 |
| 5.1 结论 | 第63-64页 |
| 5.2 展望 | 第64-65页 |
| 参考文献 | 第65-73页 |
| 附录 攻读硕士学位期间科研及发表论文情况 | 第73-75页 |
| 致谢 | 第75-76页 |
