| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 中英文缩写词 | 第10-12页 |
| 文献综述 | 第12-23页 |
| 引言 | 第23-24页 |
| 1 材料与方法 | 第24-31页 |
| 1.1 试验动物 | 第24页 |
| 1.2 试验材料与仪器 | 第24-25页 |
| 1.3 试剂配制 | 第25页 |
| 1.4 党参多糖制备工艺 | 第25-26页 |
| 1.4.1 党参多糖提取流程 | 第25-26页 |
| 1.4.2 党参多糖浓度测定 | 第26页 |
| 1.5 仔猪饲养管理以及分组 | 第26页 |
| 1.6 日粮组成 | 第26-27页 |
| 1.7 样品采集与处理 | 第27页 |
| 1.7.1 血液采集及血清制备 | 第27页 |
| 1.7.2 小肠组织采集及保存 | 第27页 |
| 1.8 生长性能测定 | 第27页 |
| 1.9 血清免疫指标及小肠黏膜SIgA水平测定 | 第27页 |
| 1.10 小肠组织SIgA、IgG和IgM蛋白表达水平的测定 | 第27-28页 |
| 1.10.1 石蜡切片制作 | 第27-28页 |
| 1.10.2 一抗最佳稀释浓度的确定 | 第28页 |
| 1.10.3 免疫组化程序 | 第28页 |
| 1.11 小肠组织IgG、IgA和IgM mRNA相对表达量的测定 | 第28-30页 |
| 1.11.1 引物设计 | 第28-29页 |
| 1.11.2 总RNA提取 | 第29页 |
| 1.11.3 反转录扩增目的基因 | 第29页 |
| 1.11.4 QPCR体系 | 第29-30页 |
| 1.11.5 实时荧光定量PCR检测 | 第30页 |
| 1.12 数据处理 | 第30-31页 |
| 2 结果与分析 | 第31-46页 |
| 2.1 党参多糖对仔猪生长性能的影响 | 第31-32页 |
| 2.2 党参多糖对仔猪血清免疫因子水平的影响 | 第32-33页 |
| 2.2.1 仔猪血清IFN-γ水平的变化 | 第32页 |
| 2.2.2 仔猪血清IL-2 水平的变化 | 第32页 |
| 2.2.3 仔猪血清IL-4 水平的变化 | 第32-33页 |
| 2.2.4 仔猪血清IL-6 水平的变化 | 第33页 |
| 2.3 党参多糖对仔猪小肠Ig A、IgG、IgM的影响 | 第33-43页 |
| 2.3.1 仔猪小肠黏膜SIgA水平变化 | 第33-34页 |
| 2.3.2 仔猪小肠组织SIgA蛋白表达的免疫组化分析结果 | 第34-37页 |
| 2.3.3 仔猪小肠组织IgG蛋白表达的免疫组化分析结果 | 第37-40页 |
| 2.3.4 仔猪小肠组织IgM蛋白表达的免疫组化分析结果 | 第40-43页 |
| 2.4 党参多糖对仔猪小肠组织IgA、IgG、IgM的mRNA相对表达量的影响 | 第43-46页 |
| 2.4.1 仔猪小肠组织IgA mRNA相对表达量RT-PCR结果 | 第43-44页 |
| 2.4.2 仔猪小肠组织IgG mRNA相对表达量RT-PCR结果 | 第44页 |
| 2.4.3 仔猪小肠组织IgM mRNA相对表达量RT-PCR结果 | 第44-46页 |
| 3 讨论 | 第46-49页 |
| 3.1 党参多糖对仔猪生长性能的影响 | 第46页 |
| 3.2 党参多糖对仔猪免疫功能的影响 | 第46-49页 |
| 3.2.1 党参多糖对仔猪血清IFN-γ、IL-2、IL-4、IL-6 水平的影响 | 第47页 |
| 3.2.2 党参多糖对仔猪小肠SIgA、IgM、IgG表达及其mRNA表达量的影响 | 第47-49页 |
| 4 结论 | 第49-50页 |
| 参考文献 | 第50-55页 |
| 附录 | 第55-61页 |
| 致谢 | 第61-62页 |
| 作者简介 | 第62页 |
