| 摘要 | 第1-8页 |
| ABSTRACT | 第8-10页 |
| 中英文对照表 | 第10-11页 |
| 引言 | 第11-14页 |
| 1 肝包虫病 | 第11页 |
| 2 宿主的抗包虫免疫应答对包虫病转归的影响 | 第11-12页 |
| 3 阿苯达唑片剂治疗包虫病的现状 | 第12页 |
| 4 阿苯达唑新剂型的发展 | 第12-14页 |
| 材料与方法 | 第14-19页 |
| 1 材料 | 第14页 |
| 2 泡状棘球蚴原头节的提取和继发性感染泡球蚴小鼠模型的建立 | 第14页 |
| ·泡状棘球蚴原头节的提取 | 第14页 |
| ·继发性感染泡球蚴小鼠模型的建立 | 第14页 |
| 3 阿苯达唑壳聚糖微球的制备 | 第14-15页 |
| ·阿苯达唑壳聚糖微球的制备方法及制备原理 | 第14-15页 |
| ·阿苯达唑壳聚糖微球制备步骤 | 第15页 |
| 4 实验设计 | 第15页 |
| 5 ELISA法测定小鼠血清IL-2、IL-10水平 | 第15-16页 |
| ·ELISA法测定小鼠血清IL-2、IL-10步骤 | 第15-16页 |
| ·ELISA法实验原理 | 第16页 |
| ·数据的处理 | 第16页 |
| 6 泡状棘球蚴组织HE染色 | 第16-17页 |
| ·组织固定 | 第16-17页 |
| ·泡球蚴组织切片制备 | 第17页 |
| ·制作泡球蚴组织切片 | 第17页 |
| ·泡球蚴组织的HE染色 | 第17页 |
| 7 高效液相法（HPLC法）定量分析小鼠肝组织中ABZ主要代谢产物浓度 | 第17-19页 |
| ·色谱条件 | 第17-18页 |
| ·阿苯达唑亚砜标准液及甲苯咪唑内标液的配置 | 第18页 |
| ·磷酸盐缓冲液的配制 | 第18页 |
| ·小鼠肝组匀浆的处理 | 第18页 |
| ·方法专属性考察 | 第18-19页 |
| 8 泡球蚴组织病理变化的辨认 | 第19页 |
| 9 统计学方法 | 第19页 |
| 结果 | 第19-29页 |
| 1 阿苯达唑标准曲线的建立与壳聚糖微球载药量检测 | 第19-20页 |
| ·阿苯达唑药物标准曲线 | 第19页 |
| ·阿苯达唑壳聚糖微球载药量包封率测定 | 第19-20页 |
| 2 各治疗组小鼠泡球蚴组织大体形态观察 | 第20-21页 |
| 3 各治疗组囊湿重抑制率 | 第21-23页 |
| 4 各治疗组泡球蚴的病理学变化 | 第23页 |
| 5 ELISA法测定IL2、IL10含量标准曲线的建立 | 第23-24页 |
| ·白细胞介素-2（IL-2）、白细胞介素-10（IL-10）标准曲线的建立 | 第23-24页 |
| ·IL-10 四参数方程 | 第24页 |
| 6 各治疗组细胞因子水平（表2图 4 图 5） | 第24-27页 |
| 7 建立肝脏组织标准曲线 | 第27页 |
| 8 给药9小时后，各治疗组肝组织中阿苯达唑亚砜浓度（表3图 6） | 第27-29页 |
| 讨论 | 第29-32页 |
| 本课题不足之处 | 第32-33页 |
| 结论 | 第33-34页 |
| 参考文献 | 第34-36页 |
| 综述 | 第36-42页 |
| 参考文献 | 第40-42页 |
| 致谢 | 第42-43页 |
| 作者简介 | 第43-44页 |
| 导师评阅表 | 第44页 |
