| 摘要 | 第1-4页 |
| Abstract | 第4-9页 |
| 1 引言 | 第9-20页 |
| ·植物抵抗干旱胁迫的机制 | 第9-10页 |
| ·植物抵抗干旱胁迫生理生化机制 | 第9-10页 |
| ·植物抵抗干旱胁迫的分子机制 | 第10页 |
| ·中间锦鸡儿研究现状 | 第10-11页 |
| ·中间锦鸡儿简介 | 第10-11页 |
| ·中间锦鸡儿抗旱性研究 | 第11页 |
| ·全长cDNA文库研究进展 | 第11-19页 |
| ·cDNA文库的类型 | 第11-13页 |
| ·cDNA文库构建的流程 | 第13-15页 |
| ·全长cDNA文库构建方法 | 第15-19页 |
| ·全长cDNA文库的应用 | 第19页 |
| ·中间锦鸡儿cDNA文库构建的研究现状 | 第19-20页 |
| ·本研究的内容、目的及意义 | 第20页 |
| 2 材料和方法 | 第20-30页 |
| ·实验材料 | 第20-22页 |
| ·植物材料 | 第20页 |
| ·菌株、载体及主要试剂 | 第20-21页 |
| ·主要培养基配制 | 第21-22页 |
| ·主要仪器设备 | 第22页 |
| ·实时荧光定量PCR及菌落PCR的相关引物 | 第22页 |
| ·植物的培养 | 第22页 |
| ·干旱处理及取样 | 第22页 |
| ·确定最佳干旱时间 | 第22-24页 |
| ·总RNA提取 | 第22-23页 |
| ·总RNA中DNA的去除 | 第23-24页 |
| ·cDNA的合成 | 第24页 |
| ·实时荧光定量PCR检测已知抗旱基因的表达量 | 第24页 |
| ·总RNA的提取(大体积) | 第24-25页 |
| ·poly A~+mRNA的分离纯化 | 第25页 |
| ·全长cDNA的合成 | 第25-26页 |
| ·cDNA第一链的合成 | 第25-26页 |
| ·cDNA第二链的合成 | 第26页 |
| ·cDNA的分段回收 | 第26-27页 |
| ·cDNA的DH5α克隆 | 第27-29页 |
| ·全长cDNA与T载体的连接 | 第27-28页 |
| ·感受态细胞制备 | 第28-29页 |
| ·区段cDNA与载体的连接产物转化大肠杆菌DH5α | 第29页 |
| ·阳性克隆的培养 | 第29页 |
| ·单克隆的PCR检测 | 第29-30页 |
| ·文库质量的检测 | 第30页 |
| ·部分克隆的测序与分析 | 第30页 |
| 3 结果与分析 | 第30-38页 |
| ·最佳土壤干旱时间的确定 | 第30-31页 |
| ·总RNA的提取 | 第31-32页 |
| ·poly A~+mRNA的分离纯化 | 第32页 |
| ·双链cDNA的合成 | 第32-33页 |
| ·cDNA的分段回收 | 第33页 |
| ·蓝白斑挑选 | 第33-34页 |
| ·阳性克隆的PCR检测 | 第34页 |
| ·文库质量的检测 | 第34-35页 |
| ·部分全长cDNA克隆的测序及比对结果 | 第35-38页 |
| 4 讨论与结论 | 第38-39页 |
| 致谢 | 第39-40页 |
| 参考文献 | 第40-46页 |
| 作者简介 | 第46页 |