| 致谢 | 第1-9页 |
| 摘要 | 第9-11页 |
| 符号及縮略语 | 第11-12页 |
| 第一章 树突状细胞的研究进展 | 第12-16页 |
| 1 DCs的生物学特性 | 第12-13页 |
| 2 DCs的不同亚群 | 第13-14页 |
| ·根据分泌细胞因子的不同分类 | 第13页 |
| ·根据表达细胞表型的不同分类 | 第13页 |
| ·根据其对T细胞诱导分化的功能分类 | 第13-14页 |
| 3 DCs的体外培养条件与方法 | 第14页 |
| ·DCs的培养条件 | 第14页 |
| ·DCs的培养方法 | 第14页 |
| 4 DC与Th细胞之间的关系 | 第14-15页 |
| 5 结语 | 第15-16页 |
| 第二章 中药对DC调控作用的研究 | 第16-24页 |
| 1 中药对DC及对其功能各方面的影响 | 第16-18页 |
| ·中药对DC形态的调控作用 | 第16页 |
| ·中药对DCs增殖的调控作用 | 第16页 |
| ·中药对DCs表面分子表达的影响 | 第16-17页 |
| ·中药对DCs吞噬及抗原提呈能力的影响 | 第17页 |
| ·中药对DCs分泌细胞因子的影响 | 第17-18页 |
| ·中药作用后的DCs对混合淋巴细胞反应的影响 | 第18页 |
| ·中药对DCs抗肿瘤作用的影响 | 第18页 |
| ·中药对DCs抗病毒作用的影响 | 第18页 |
| 2 板蓝根多糖的免疫调节机理研究 | 第18-19页 |
| 3 展望 | 第19-24页 |
| 试验一 DCs亚群细胞体外诱导培养方法的建立 | 第24-30页 |
| 1 材料与方法 | 第24-25页 |
| ·材料 | 第24页 |
| ·实验动物 | 第24页 |
| ·主要试剂 | 第24页 |
| ·主要溶液的配制 | 第24页 |
| ·主要仪器与设备 | 第24页 |
| ·方法 | 第24-25页 |
| ·小鼠骨髓来源DCs的体外诱导及培养 | 第24-25页 |
| ·形态学鉴定 | 第25页 |
| ·倒置显微镜观察细胞形态 | 第25页 |
| ·扫描电镜观察DCs表面形态 | 第25页 |
| ·流式细胞仪检测各DCs亚群表面分子的表达 | 第25页 |
| 2 结果 | 第25-28页 |
| ·倒置显微镜观察细胞形态 | 第25-26页 |
| ·扫描电镜观察细胞形态 | 第26-28页 |
| ·流式细胞仪检测各DCs亚群表面分子的表达 | 第28页 |
| 3 分析讨论 | 第28-30页 |
| 试验二 IRPS对体外DCs亚群成熟和功能的影响研究 | 第30-44页 |
| 1 材料与方法 | 第30-32页 |
| ·材料 | 第30页 |
| ·主要试剂 | 第30页 |
| ·主要溶液的配制 | 第30页 |
| ·主要仪器与设备 | 第30页 |
| ·方法 | 第30-32页 |
| ·IRPS对DCs亚群最佳增殖浓度的确定 | 第30页 |
| ·IRPS对各DCs亚群形态的影响 | 第30-31页 |
| ·同种混合淋巴细胞反应 | 第31页 |
| ·刺激细胞的制备 | 第31页 |
| ·混合淋巴细胞的制备 | 第31页 |
| ·IRPS对各DCs亚群分泌细胞因子的影响 | 第31-32页 |
| ·样本制备 | 第31页 |
| ·试剂准备 | 第31-32页 |
| ·试验流程 | 第32页 |
| ·IRPS对各DCs亚群表面分子表达的影响 | 第32页 |
| ·数据分析 | 第32页 |
| 2 结果 | 第32-41页 |
| ·IRPS对DCs亚群最佳增殖浓度的确定 | 第32-33页 |
| ·IRPS对各DCs亚群形态的影响 | 第33-34页 |
| ·IRPS对各DCs亚群分泌细胞因子的影响 | 第34-37页 |
| ·同种混合淋巴细胞反应 | 第37页 |
| ·同种混合淋巴细胞反应中淋巴细胞分泌细胞因子的水平 | 第37-40页 |
| ·IRPS对各DCs亚群表面分子表达的影响 | 第40-41页 |
| 3 分析讨论 | 第41-44页 |
| ·Luminex xMAP技术优势 | 第41页 |
| ·IRPS对各DCs亚群分泌细胞因子的影响 | 第41-42页 |
| ·各DC亚群对淋巴细胞分泌细胞因子的影响 | 第42-43页 |
| ·IRPS对各DCs亚群的双向调节作用 | 第43页 |
| ·IRPS对各DCs亚群表面分子标志的影响 | 第43-44页 |
| 全文结论 | 第44-46页 |
| 参考文献 | 第46-52页 |
| ABSTRACT | 第52-53页 |