| 中文摘要 | 第1-7页 |
| Abstract | 第7-9页 |
| 英文缩略词表 | 第9-10页 |
| 前言 | 第10-12页 |
| 第一部分 姜黄素衍生物C086对人胃癌细胞SGC-7901侵袭运动能力的影响及机制的研究 | 第12-25页 |
| 1 材料 | 第12-13页 |
| ·药品和试剂 | 第12页 |
| ·细胞株 | 第12页 |
| ·主要仪器 | 第12-13页 |
| ·主要试剂的配制 | 第13页 |
| 2 方法 | 第13-18页 |
| ·样品溶液的制备 | 第13页 |
| ·MTT 法测定 C086 对胃癌细胞 SGC-7901 增殖的量效与时效作用 | 第13-14页 |
| ·集落形成试验检测 C086 对胃癌细胞 SGC-7901 克隆原细胞的抑制作用 | 第14页 |
| ·划痕实验检测 C086 对肿瘤细胞迁移能力的影响 | 第14页 |
| ·用 Transwell 小室检测 C086 对肿瘤细胞侵袭力的影响 | 第14-15页 |
| ·用 Western-blot 方法检测 C086 对 SGC-7901 中 MMP-2 和 MMP-9 蛋白含量的影响 | 第15-18页 |
| ·Western-blot 相关缓冲液配制 | 第15-16页 |
| ·全细胞蛋白样品制备 | 第16页 |
| ·考马斯亮蓝法对蛋白质进行定量 | 第16页 |
| ·SDS-PAGE 电泳分离蛋白质 | 第16-18页 |
| ·统计处理 | 第18页 |
| 3 结果 | 第18-23页 |
| ·MTT 法测定 C086 对胃癌细胞 SGC-7901 增殖的量效与时效作用 | 第18-19页 |
| ·集落形成试验检测 C086 对胃癌细胞 SGC-7901 克隆原细胞的抑制作用 | 第19-20页 |
| ·划痕实验检测 C086 对肿瘤细胞迁移能力的影响 | 第20-21页 |
| ·用 Transwell 小室检测 C086 对肿瘤细胞侵袭力的影响 | 第21-22页 |
| ·用 Western-blot 方法检测 C086 对 SGC-7901 中 MMP-2 和 MMP-9 蛋白含量的影响 | 第22-23页 |
| 4 讨论 | 第23-24页 |
| 5 小结 | 第24-25页 |
| 第二部分 黄素衍生物 C086 对小鼠肝癌 H_(22)体内抗肿瘤转移作用 | 第25-30页 |
| 1 材料 | 第25页 |
| ·小鼠肝癌 H_(22)腹水型细胞株及培养条件 | 第25页 |
| ·实验动物 | 第25页 |
| ·试剂和仪器 | 第25页 |
| 2 方法 | 第25-27页 |
| ·小鼠肝癌 H_(22)细胞腹水瘤肺转移模型的建立 | 第25-26页 |
| ·实验分组及给药方案 | 第26页 |
| ·指标观察与检测 | 第26页 |
| ·计算肺结节数、结节抑制率 | 第26页 |
| ·计算肺指数 | 第26页 |
| ·标本采集与处理 | 第26-27页 |
| ·肺组织切片HE染色 | 第26-27页 |
| ·统计处理 | 第27页 |
| 3 结果 | 第27-28页 |
| ·计算肺结节数、结节抑制率 | 第27页 |
| ·肺组织观察及切片HE染色 | 第27-28页 |
| 4 讨论 | 第28-29页 |
| 5 小结 | 第29-30页 |
| 第三部分 C086对裸鼠移植瘤生长的影响 | 第30-38页 |
| 1 材料 | 第30页 |
| ·试剂和仪器 | 第30页 |
| ·实验动物 | 第30页 |
| 2 方法 | 第30-32页 |
| ·药物配制方法 | 第30-31页 |
| ·裸鼠实验模型的建立 | 第31页 |
| ·实验分组及给药方案 | 第31页 |
| ·Western-blot 检测C086对SGC-7901裸鼠异种移植瘤中蛋白含量的影响 | 第31-32页 |
| ·Annxin-V-FITC/PI 双染法检测细胞凋亡 | 第32页 |
| ·统计处理 | 第32页 |
| 3 结果 | 第32-35页 |
| ·C086 对裸小鼠人胃癌细胞 SGC-7901 移植瘤生长的影响 | 第32-34页 |
| ·Western-blot 检测 C086 对 SGC-7901 裸鼠异种移植瘤中蛋白含量的影响 | 第34页 |
| ·Annxin-V-FITC/PI双染法检测细胞凋亡 | 第34-35页 |
| 4 讨论 | 第35-37页 |
| 5 小结 | 第37-38页 |
| 结论 | 第38-39页 |
| 参考文献 | 第39-43页 |
| 致谢 | 第43-44页 |
| 综述 | 第44-51页 |
| 参考文献 | 第49-51页 |
