提要 | 第1-6页 |
中文摘要 | 第6-9页 |
ABSTRACT | 第9-17页 |
第一章 前言 | 第17-56页 |
第一节 生物体抗氧化体系 | 第17-29页 |
1 天然酶抗氧化体系 | 第18-24页 |
·谷胱甘肽过氧化物酶(GPx) | 第18-21页 |
·超氧化物歧化酶(SOD) | 第21-23页 |
·过氧化氢酶(CAT) | 第23-24页 |
2 人工酶抗氧化体系 | 第24-29页 |
·GPx 模拟物 | 第24-27页 |
·SOD 模拟物 | 第27-28页 |
·多酶协同模拟物 | 第28-29页 |
第二节 生物自修复体系 | 第29-35页 |
1 生物体的自修复 | 第29-30页 |
·组织修复 | 第29-30页 |
·核酸的自修复 | 第30页 |
2 人工自修复材料 | 第30-35页 |
·含修复剂型自修复材料 | 第30-32页 |
·本体型自修复材料 | 第32-35页 |
第三节 生物马达分子 | 第35-43页 |
1 生物分子马达 | 第36-37页 |
·肌球蛋白 | 第36页 |
·动力蛋白 | 第36-37页 |
·驱动蛋白 | 第37页 |
2 人工分子马达 | 第37-43页 |
·电泳型马达模型 | 第37-39页 |
·气泡推动型马达模型 | 第39-40页 |
·电解质扩散型电泳马达模型 | 第40-41页 |
·非电解质扩散电泳推动模型 | 第41-43页 |
本论文立论依据 | 第43-45页 |
参考文献 | 第45-56页 |
第二章 具有 GPx 和 SOD 活力的双酶协同抗氧化体系的构建 | 第56-87页 |
第一节 序言 | 第56-58页 |
第二节 GPx 模拟物的构建,表达,纯化及其表征 | 第58-70页 |
1 硒化铁蛋白(Se-Fn)的构建及表达 | 第58-61页 |
·硒化铁蛋白表达载体的构建 | 第58-61页 |
2 硒化铁蛋白、野生型铁蛋白的表达、分离提纯及表征 | 第61-67页 |
·实验材料 | 第61-63页 |
·实验方法 | 第63-65页 |
·结果分析 | 第65-67页 |
3 硒化铁蛋白的酶学性质分析 | 第67-70页 |
·实验材料 | 第67页 |
·实验方法 | 第67-68页 |
·实验结果 | 第68-69页 |
·讨论 | 第69-70页 |
第三节 SOD 模拟物[Mn-THPP-(PEG2000-BA)4]的合成与表征 | 第70-74页 |
1 [Mn-THPP-(PEG2000-BA)4]的合成与表征 | 第70-72页 |
·实验材料 | 第70页 |
·实验仪器 | 第70页 |
·实验方法 | 第70-72页 |
2 结果与讨论 | 第72-74页 |
·Mn-THPP-(PEG2000-BA)4的紫外表征 | 第72-73页 |
·Mn-THPP-(PEG2000-BA)4的 SOD 活力表征 | 第73-74页 |
第四节 双酶模拟物的制备及性质表征 | 第74-77页 |
1 实验部分 | 第74-75页 |
·实验材料 | 第74页 |
·实验仪器 | 第74页 |
·实验方法 | 第74-75页 |
2 实验结果 | 第75-77页 |
·双酶模拟物的形貌表征 | 第75-76页 |
·双酶模拟物的酶活力表征 | 第76-77页 |
第五节 双酶微凝胶的生物学效应 | 第77-82页 |
1 实验部分 | 第77-79页 |
·实验材料 | 第77-78页 |
·实验仪器 | 第78页 |
·实验方法 | 第78-79页 |
2 结果分析 | 第79-82页 |
·双酶模拟物对损伤线粒体膨胀度的影响 | 第79页 |
·双酶模拟物对线粒体脂质过氧化的抑制 | 第79-80页 |
·讨论 | 第80-82页 |
本章小结 | 第82-83页 |
参考文献 | 第83-87页 |
第三章 双酶自修复体系的构建及其性能研究 | 第87-105页 |
第一节 序言 | 第87-89页 |
第二节 蛋白凝胶体系的构建 | 第89-92页 |
1 实验材料 | 第89页 |
·实验试剂 | 第89页 |
·实验仪器 | 第89页 |
2 实验方法 | 第89页 |
·蛋白水凝胶形成速度的观测 | 第89页 |
·蛋白水凝胶的流变性质测试 | 第89页 |
3 结果分析 | 第89-92页 |
·不同 pH 条件对凝胶形成速度的影响 | 第89-90页 |
·不同条件下蛋白水凝胶的流变性质 | 第90-92页 |
·讨论 | 第92页 |
第三节 双酶蛋白凝胶体系的构建 | 第92-97页 |
1 实验材料 | 第92页 |
·实验试剂 | 第92页 |
·实验仪器 | 第92页 |
2 实验方法 | 第92-93页 |
·葡萄糖氧化酶(GOx)活力的测定 | 第92-93页 |
·过氧化氢酶(CAT)活力的测定 | 第93页 |
·葡萄糖氧化酶及过氧化氢酶对凝胶体系的影响 | 第93页 |
3 结果分析 | 第93-97页 |
·不同 pH 条件下葡萄糖氧化酶(GOx)活力的测定 | 第93-94页 |
·不同戊二醛含量下葡萄糖氧化酶(GOx)活力的测定 | 第94-95页 |
·不同戊二醛含量下过氧化氢酶(CAT)活力的测定 | 第95页 |
·不同 pH 条件下过氧化氢酶(CAT)活力的测定 | 第95-96页 |
·过氧化氢酶对凝胶体系的影响 | 第96-97页 |
·讨论 | 第97页 |
第四节 双酶自修复体系的修复性能表征 | 第97-101页 |
1 实验材料 | 第97-98页 |
·实验试剂 | 第97页 |
·实验仪器 | 第97-98页 |
2 实验方法 | 第98页 |
·自修复性能表征 | 第98页 |
3 结果分析 | 第98-101页 |
·表观形态表征 | 第98-99页 |
·划痕修复情况表征 | 第98-99页 |
·切断后再次连接表征 | 第99页 |
·力学性质表征 | 第99-101页 |
·讨论 | 第101页 |
本章小结 | 第101-102页 |
参考文献 | 第102-105页 |
第四章 双酶催化的微马达的构建及其运动研究 | 第105-117页 |
第一节 序言 | 第105-107页 |
第二节 微马达制备 | 第107-109页 |
1 实验部分 | 第107-109页 |
·实验材料 | 第107页 |
·实验方法 | 第107页 |
·结果分析 | 第107-108页 |
·讨论 | 第108-109页 |
第三节 双酶驱动体系构建 | 第109-111页 |
1 实验部分 | 第109-111页 |
·实验材料 | 第109页 |
·实验方法 | 第109页 |
·结果分析 | 第109-111页 |
第四节 硅胶微马达运动研究 | 第111-114页 |
1 实验部分 | 第111-114页 |
·实验试剂 | 第111页 |
·实验仪器 | 第111页 |
·结果分析 | 第111-114页 |
本章小结 | 第114-115页 |
参考文献 | 第115-117页 |
结论 | 第117-118页 |
作者简历 | 第118页 |
博士期间发表的论文 | 第118-119页 |
致谢 | 第119页 |