| 目录 | 第1-6页 |
| 摘要 | 第6-8页 |
| Abstract | 第8-11页 |
| 第一章 综述 | 第11-24页 |
| 1 多糖及其硫酸酯化多糖 | 第11-14页 |
| ·松花粉 | 第11页 |
| ·多糖 | 第11-12页 |
| ·多糖的硫酸酯化 | 第12-14页 |
| 2 脾脏 T 淋巴细胞的分离纯化 | 第14页 |
| 3 T 淋巴细胞表面受体研究 | 第14-16页 |
| ·T 淋巴细胞表面多糖受体 TCR/CD3 | 第15页 |
| ·T 淋巴细胞表面 Toll 样受体 | 第15-16页 |
| 4 T 淋巴细胞内钙通道研究 | 第16-22页 |
| ·钙离子 | 第16页 |
| ·钙离子通路简介 | 第16-17页 |
| ·T 细胞内主要钙离子通路研究进展（钙池操纵钙离子通道） | 第17-21页 |
| ·多糖与 T 淋巴细胞内钙离子关系 | 第21-22页 |
| 5 胞内钙离子浓度变化对细胞因子产生的影响 | 第22页 |
| 6 多糖对 T 细胞细胞因子产生的影响 | 第22-23页 |
| 7、课题的目的意义 | 第23-24页 |
| 第二章 马尾松花粉多糖的提取、分离纯化及酯化 | 第24-31页 |
| 1 材料与试剂 | 第24页 |
| 2 仪器与设备 | 第24-25页 |
| 3 方法步骤 | 第25-27页 |
| ·马尾松花粉多糖的提取 | 第25页 |
| ·多糖分离纯化 | 第25-26页 |
| ·多糖的酯化 | 第26-27页 |
| 4 实验结果 | 第27-30页 |
| ·马尾松花粉多糖得率 | 第27页 |
| ·多糖的分离纯化 | 第27-28页 |
| ·多糖的硫酸酯化及鉴定 | 第28-30页 |
| 5 讨论 | 第30-31页 |
| 第三章 多糖及酯化多糖对小鼠 T 淋巴细胞增殖的影响 | 第31-39页 |
| 1 材料与试剂 | 第31-32页 |
| ·动物 | 第31页 |
| ·材料 | 第31页 |
| ·试剂配制 | 第31-32页 |
| 2 仪器与设备 | 第32-33页 |
| 3 方法步骤 | 第33-34页 |
| ·小鼠脾细胞的制备 | 第33页 |
| ·T 细胞的分离纯化 | 第33页 |
| ·台盼蓝（Trypan blue）排斥实验检查细胞成活率 | 第33-34页 |
| ·流式细胞术检测细胞纯度 | 第34页 |
| ·MTT 比色法检测 PPM60 及 SPPM60 对脾细胞增殖的影响 | 第34页 |
| ·统计学处理 | 第34页 |
| 4 实验结果 | 第34-37页 |
| ·台盼蓝排斥实验 | 第34页 |
| ·细胞流式技术检测分离纯化 T 细胞纯度 | 第34-35页 |
| ·PPM60 及 SPPM60 对 T 细胞的增殖作用 | 第35-37页 |
| ·PPM60 及 SPPM60 对 T 细胞的增殖作用 | 第37页 |
| 5 讨论 | 第37-39页 |
| 第四章 多糖及酯化多糖对小鼠 T 细胞[Ca2+]i调控机制的初步研究 | 第39-53页 |
| 1 材料与试剂 | 第39-40页 |
| ·细胞 | 第39页 |
| ·药物与试剂 | 第39-40页 |
| ·试剂配制 | 第40页 |
| 2 仪器与设备 | 第40-41页 |
| 3 方法与步骤 | 第41-42页 |
| ·T 细胞的制备 | 第41页 |
| ·fura/2-AM 负载 | 第41页 |
| ·抑制剂组细胞处理 | 第41页 |
| ·T 细胞内[Ca2+]i测定 | 第41-42页 |
| ·统计学处理结果 | 第42页 |
| 5 实验结果 | 第42-48页 |
| ·T 细胞内[Ca2+]i测定 | 第42-48页 |
| 6 讨论 | 第48-53页 |
| 第五章 多糖及酯化多糖对小鼠脾脏 T 细胞细胞因子产生的影响 | 第53-58页 |
| 1 材料与试剂 | 第53页 |
| 2 仪器与设备 | 第53页 |
| 3 方法步骤 | 第53-55页 |
| ·T 细胞培养上清液的准备 | 第53-54页 |
| ·细胞因子检测前准备 | 第54页 |
| ·细胞因子检测 | 第54-55页 |
| 4 实验结果 | 第55-56页 |
| ·多糖及其酯化物对 T 细胞培养上清 IL-2 产生的影响 | 第55页 |
| ·多糖及其酯化物对 T 细胞培养上清 IL-4 产生的影响 | 第55-56页 |
| 5 讨论 | 第56-58页 |
| 结论 | 第58-59页 |
| 展望 | 第59-60页 |
| 参考文献 | 第60-66页 |
| 发表文章 | 第66-67页 |
| 致谢 | 第67页 |
