| 图片目录 | 第1-11页 |
| 表格目录 | 第11-12页 |
| 缩略词表 | 第12-13页 |
| 中文摘要 | 第13-16页 |
| 英文摘要 | 第16-19页 |
| 第一部分 苦瓜AG相似基因分子克隆和功能研究 | 第19-62页 |
| 摘要 | 第19页 |
| 1 引言 | 第19-21页 |
| 2 材料和方法 | 第21-33页 |
| ·实验材料和试剂 | 第21-22页 |
| ·植物材料 | 第21页 |
| ·菌种 | 第21-22页 |
| ·载体 | 第22页 |
| ·主要试剂 | 第22页 |
| ·实验方法 | 第22-33页 |
| ·苦瓜RNA的提取 | 第22页 |
| ·苦瓜18S rRNA基因的克隆 | 第22-23页 |
| ·苦瓜AG相似基因的克隆 | 第23-26页 |
| ·苦瓜McAG2基因的3’端部分片段克隆 | 第23-24页 |
| ·苦瓜McAG2基因的5’端部分片段克隆 | 第24-26页 |
| ·苦瓜McAG2基因生物信息学分析 | 第26页 |
| ·苦瓜AG相似基因的组织特异性表达研究 | 第26-29页 |
| ·RT—PCR分析 | 第26-27页 |
| ·实时荧光定量RT-PCR分析 | 第27-29页 |
| ·McAG2基因原核表达 | 第29-31页 |
| ·McAG2基因转拟南芥真核表达研究 | 第31-33页 |
| ·McAG2基因的ORF获得 | 第31页 |
| ·表达载体pBI121-McAG2的构建 | 第31-32页 |
| ·转化连接子的鉴定 | 第32页 |
| ·拟南芥种植 | 第32页 |
| ·花序浸染法转化拟南芥 | 第32页 |
| ·转基因拟南芥筛选 | 第32-33页 |
| ·转基因植株的检测 | 第33页 |
| 3 结果与分析 | 第33-54页 |
| ·苦瓜叶RNA和DNA的质量分析 | 第33-34页 |
| ·苦瓜18S rRNA基因部分片段的克隆 | 第34-35页 |
| ·苦瓜McAG2基因全长cDNA的克隆 | 第35-36页 |
| ·苦瓜McAG2基因生物信息学分析 | 第36-42页 |
| ·苦瓜McAG2基因推测蛋白质的性质预测 | 第36-39页 |
| ·蛋白质的分子量及等电点预测 | 第36-37页 |
| ·蛋白质的氨基酸组成 | 第37页 |
| ·蛋白质的二级结构预测 | 第37-38页 |
| ·蛋白质的三级结构预测 | 第38-39页 |
| ·氨基酸序列的同源性分析 | 第39-40页 |
| ·苦瓜McAG2基因推测氨基酸保守结构域和C末端基序分析 | 第40-41页 |
| ·构建系统进化树分析 | 第41-42页 |
| ·原核表达分析 | 第42-44页 |
| ·组织特异性表达研究 | 第44-51页 |
| ·RT-PCR分析 | 第44-46页 |
| ·实时荧光定量RT-PCR分析 | 第46-51页 |
| ·标准模板的获得 | 第46页 |
| ·标准曲线分析结果 | 第46-49页 |
| ·苦瓜AG相似基因的相对定量 | 第49-51页 |
| ·McAG2转基因研究 | 第51-54页 |
| ·转基因植株抗Kan筛选 | 第51-53页 |
| ·转基因拟南芥PCR检测阳性植株 | 第53页 |
| ·转基因拟南芥的表型观察 | 第53页 |
| ·RT-PCR检测 | 第53-54页 |
| 4 讨论 | 第54-56页 |
| 小结 | 第56-57页 |
| 参考文献 | 第57-62页 |
| 第二部分 苦瓜AGL6相似基因分子克隆和表达分析研究 | 第62-89页 |
| 摘要 | 第62页 |
| 1 引言 | 第62-63页 |
| 2 材料和方法 | 第63-69页 |
| ·实验材料和试测 | 第63-64页 |
| ·植物材料 | 第63页 |
| ·菌种 | 第63页 |
| ·载体 | 第63-64页 |
| ·主要试剂 | 第64页 |
| ·实验方法 | 第64-69页 |
| ·苦瓜RNA的提取 | 第64页 |
| ·苦瓜AGL6相似基因的克隆 | 第64-67页 |
| ·苦瓜McAG6基因的3’端部分片段克隆 | 第64-66页 |
| ·苦瓜McAG6基因的5’端部分片段克隆 | 第66-67页 |
| ·苦瓜McAG6基因生物信息学分析 | 第67页 |
| ·RT-PCR分析 | 第67-68页 |
| ·实时荧光定量RT-PCR分析 | 第68-69页 |
| 3 结果与分析 | 第69-84页 |
| ·苦瓜叶RNA和DNA的质量分析 | 第69-70页 |
| ·苦瓜McAG6基因全长cDNA的克隆 | 第70-72页 |
| ·生物信息学分析 | 第72-80页 |
| ·苦瓜McAG6基因推测蛋白质的性质预测 | 第72-76页 |
| ·蛋白质的分子量及等电点预测 | 第72页 |
| ·蛋白质的氨基酸组成 | 第72-73页 |
| ·蛋白质的疏水区预测 | 第73页 |
| ·蛋白质的修饰位点预测 | 第73-75页 |
| ·蛋白质的二级结构预测 | 第75页 |
| ·蛋白质的三级结构预测 | 第75-76页 |
| ·氨基酸序列的同源性分析 | 第76-78页 |
| ·苦瓜McAG6基因推测氨基酸保守结构域和C末端基序分析 | 第78-79页 |
| ·构建系统进化树分析 | 第79-80页 |
| ·RT-PCR分析McAG6基因表达特性 | 第80-81页 |
| ·实时荧光定量RT-PCR分析 | 第81-84页 |
| ·标准模板的获得 | 第81页 |
| ·标准曲线分析结果 | 第81-82页 |
| ·苦瓜AGL6相似基因的相对定量 | 第82-84页 |
| 4 讨论 | 第84-85页 |
| 小结 | 第85-86页 |
| 参考文献 | 第86-89页 |
| 第三部分 苦瓜AG相似基因启动子克隆、分析及其瞬时表达载体构建 | 第89-105页 |
| 摘要 | 第89页 |
| 1 引言 | 第89-90页 |
| 2 材料和方法 | 第90-96页 |
| ·实验材料和试剂 | 第90-92页 |
| ·植物材料 | 第90页 |
| ·菌种 | 第90页 |
| ·载体 | 第90-91页 |
| ·主要试剂 | 第91页 |
| ·引物 | 第91-92页 |
| ·实验步骤 | 第92-96页 |
| ·苦瓜幼叶DNA的提取 | 第92页 |
| ·苦瓜基因组DNA步移文库的构建及启动子的克隆 | 第92-93页 |
| ·McAG2基因启动子克隆 | 第93-94页 |
| ·启动子分析 | 第94页 |
| ·苦瓜McAG2基因缺失分析的表达载体构建 | 第94-96页 |
| 3 结果与分析 | 第96-101页 |
| ·苦瓜McAG2基因启动子片段的克隆 | 第96-98页 |
| ·苦瓜McAG2基因5’上游调控序列的功能元件分析 | 第98-100页 |
| ·McAG2基因5’上游调控序列缺失表达载体构建 | 第100-101页 |
| 4 讨论 | 第101-102页 |
| 小结 | 第102页 |
| 参考文献 | 第102-105页 |
| MADS-box基因研究进展 | 第105-124页 |
| 1 引言 | 第105页 |
| 2 MADS-box基因类型和结构 | 第105-107页 |
| 3 植物MADS-box基因外显子和内含子结构 | 第107-109页 |
| 4 植物MADS-box基因在基因组中的分布 | 第109页 |
| 5 MADS-box基因与花发育 | 第109-112页 |
| ·经典ABC模型 | 第109-110页 |
| ·ABCE模型 | 第110-111页 |
| ·胚珠决定因子 | 第111-112页 |
| 6 MADS-box蛋白的相互作用的四聚体模型 | 第112页 |
| 7 植物MADS-box基因的功能 | 第112-115页 |
| ·MADS-box基因与控制开花时间 | 第113页 |
| ·植物MADS-box基因与果实发育 | 第113-114页 |
| ·植物MADS-box基因参与胚珠的发育 | 第113页 |
| ·MADS-box与果实成熟 | 第113-114页 |
| ·MADS-box基因与果实开裂 | 第114页 |
| ·MADS-box基因与根的发育 | 第114页 |
| ·MADS-box基因与叶的发育 | 第114-115页 |
| ·其它功能 | 第115页 |
| 8 MADS-box基因的进化关系 | 第115页 |
| 9 展望 | 第115-117页 |
| 参考文献 | 第117-124页 |
| 致谢 | 第124-126页 |
| 在读期间发表和待发表论文情况 | 第126页 |
| 获奖情况 | 第126-127页 |
