| 摘要 | 第1-12页 |
| ABSTRACT | 第12-14页 |
| 第一章 文献综述 | 第14-23页 |
| 1 血管紧张素转换酶(ACE)在血压调控体系中的作用 | 第14-15页 |
| 2 血管紧张素转化酶抑制肽(ACEIP)研究进展 | 第15-20页 |
| ·蛇毒ACEIP | 第15-16页 |
| ·食源性ACEIP | 第16页 |
| ·ACEIP的构效关系 | 第16-17页 |
| ·ACEI肽活性评价 | 第17-18页 |
| ·食源性ACEIP的特点 | 第18-19页 |
| ·ACEIP的开发方向和发展前景 | 第19-20页 |
| 3 谷朊粉的研究、开发和应用概况 | 第20-21页 |
| ·谷朊粉的应用 | 第20-21页 |
| ·谷朊粉的化学改性和酶法加工 | 第21页 |
| 4 本研究选题意义和主要研究内容 | 第21-23页 |
| 第二章 谷朊蛋白ACEIP的酶法制备 | 第23-37页 |
| 1 材料与方法 | 第23-28页 |
| ·材料试剂 | 第23页 |
| ·试剂配制 | 第23-24页 |
| ·仪器 | 第24页 |
| ·试验方法 | 第24-28页 |
| ·蛋白质含量测定 | 第24页 |
| ·粗脂肪含量测定 | 第24页 |
| ·水分含量测定 | 第24页 |
| ·肽含量测定 | 第24页 |
| ·水解度(DH)的测定 | 第24-25页 |
| ·ACE酶活测定 | 第25-26页 |
| ·ACE抑制率的体外测定 | 第26-27页 |
| ·酶解谷朊蛋白 | 第27页 |
| ·兔肺血管紧张素转换酶(ACE)制备 | 第27页 |
| ·实验蛋白酶品种的筛选 | 第27页 |
| ·酶解工艺的优化 | 第27-28页 |
| 2 结果与分析 | 第28-35页 |
| ·谷朊粉成分测定 | 第28页 |
| ·兔肺血管紧张素转换酶制备和活力测定 | 第28-29页 |
| ·制备ACEIP的蛋白酶品种筛选 | 第29页 |
| ·碱性蛋白酶水解谷朊粉条件研究 | 第29-32页 |
| ·水解时间对ACEIP活性的影响 | 第30页 |
| ·反应体系PH对ACEIP活性的影响 | 第30-31页 |
| ·反应温度对ACEIP活性的影响 | 第31页 |
| ·酶浓度对酶解产物活性的影响 | 第31-32页 |
| ·底物浓度对对产物活性的影响 | 第32页 |
| ·响应面实验对酶解条件的优化 | 第32-35页 |
| ·因素选择和水平设定 | 第32页 |
| ·实验设计和结果 | 第32-33页 |
| ·模型建立和评价 | 第33-34页 |
| ·实验条件优化及模型预测 | 第34-35页 |
| 3 讨论 | 第35-37页 |
| 第三章 超滤、纳滤膜分离技术的应用 | 第37-45页 |
| 1 材料与方法 | 第37-39页 |
| ·材料试剂 | 第37页 |
| ·主要仪器和设备 | 第37-38页 |
| ·试验方法 | 第38-39页 |
| ·超滤实验方法 | 第38页 |
| ·纳滤实验方法 | 第38-39页 |
| ·膜通量的计算方法 | 第39页 |
| ·纳滤膜脱盐率计算方法 | 第39页 |
| ·滤液中肚含量测定 | 第39页 |
| 2 实验结果与讨论 | 第39-45页 |
| ·超滤实验结果 | 第39-42页 |
| ·超滤通量随时间的变化 | 第39-40页 |
| ·膜分离过程中温度的变化 | 第40页 |
| ·超滤产物的肽回收率 | 第40-41页 |
| ·超滤产物ACE抑制活性 | 第41-42页 |
| ·纳滤实验结果 | 第42-44页 |
| ·通量随时间的变化 | 第42页 |
| ·膜分离过程中温度的变化 | 第42-43页 |
| ·纳滤浓缩作用 | 第43页 |
| ·纳滤脱盐作用 | 第43页 |
| ·纳滤液ACE抑制活性变化 | 第43-44页 |
| ·结论 | 第44-45页 |
| 第四章 离子交换和RP-HPLC对谷朊蛋白ACEIP组分的分离研究 | 第45-55页 |
| 1 材料与方法 | 第45-48页 |
| ·材料试剂 | 第45页 |
| ·仪器 | 第45-46页 |
| ·试验方法 | 第46-48页 |
| ·离子交换介质的选择 | 第46页 |
| ·离子交换树脂的处理方法 | 第46-47页 |
| ·CM纤维素离子交换层析方法 | 第47-48页 |
| ·离子交换树脂PH测定方法 | 第48页 |
| ·RP-HPLC色谱条件和方法 | 第48页 |
| 2 实验结果与讨论 | 第48-53页 |
| ·离子交换树脂PH测定结果 | 第48-49页 |
| ·CM-52纤维素的检测结果 | 第49-50页 |
| ·离子交换层析二次分离 | 第50-51页 |
| ·RP-HPLC对过程组分的分析 | 第51-53页 |
| ·谷朊蛋白水解原液的RP-HPLC肽谱分析 | 第51页 |
| ·膜分离P7组分的RP-HPLC肽谱 | 第51-52页 |
| ·离交层析组分的RP-HPLC肽谱 | 第52页 |
| ·RP-HPLC的分步收集对ACEIP组分的制备 | 第52-53页 |
| 3 讨论 | 第53-55页 |
| ·谷朊蛋白ACEIP制备过程活性变化 | 第53-54页 |
| ·RP-HPLC对ACEIP组分分离和组成鉴别 | 第54-55页 |
| 第五章 谷朊蛋白ACEIP对高血压大鼠降压活性初步研究 | 第55-61页 |
| 1 材料与方法 | 第55-56页 |
| ·材料试剂 | 第55页 |
| ·仪器 | 第55-56页 |
| ·试验方法 | 第56页 |
| ·灌胃前准备及饲养条件 | 第56页 |
| ·肾性高血压大鼠降压活性预测实验 | 第56页 |
| ·实验用谷朊蛋白ACE抑制活性肽配制 | 第56页 |
| ·原发性高血压大鼠(SHR)血压的测定方法 | 第56页 |
| ·原发性高血压大鼠(SHR)一次性给药剂量实验设计 | 第56页 |
| ·原发性高血压大鼠(SHR)长期给药动物实验设计 | 第56页 |
| 2 实验结果 | 第56-59页 |
| ·实验用肾性高血压大鼠基本情况 | 第57页 |
| ·肾性高血压大鼠降压实验结果 | 第57页 |
| ·原发性高血压大鼠(SHR)30D饲喂实验 | 第57-59页 |
| ·原发性大鼠0.5G/(KG·D)剂量试验结果 | 第58页 |
| ·原发性大鼠1.0G/(KG·D)剂量试验结果 | 第58页 |
| ·原发性大鼠2.0G/(KG·D)剂量试验结果 | 第58-59页 |
| ·原发性大鼠30D饲喂试验结果 | 第59页 |
| 3 讨论 | 第59-61页 |
| 全文总结 | 第61-62页 |
| 实验创新点及工作展望 | 第62-63页 |
| 参考文献 | 第63-68页 |
| 致谢 | 第68-69页 |
| 附硕士期间发表论文 | 第69页 |
