固定化混合酶系法和纳滤耦联技术制备高纯度低聚果糖的研究
| 摘要 | 第1-6页 |
| ABSTRACT | 第6-11页 |
| 第一章 综述 | 第11-23页 |
| ·FOS的研究现状及进展 | 第11-13页 |
| ·FOS的结构与来源 | 第11页 |
| ·FOS的理化性质与生理功能 | 第11-13页 |
| ·FOS的定量检测 | 第13页 |
| ·FOS的生产方法 | 第13-17页 |
| ·以菊芋为原料 | 第14页 |
| ·以蔗糖为原料 | 第14-15页 |
| ·FOS的纯化方法 | 第15-17页 |
| ·FOS的应用与前景 | 第17-20页 |
| ·FOS产品的相关产业 | 第17-19页 |
| ·FOS市场情况 | 第19-20页 |
| ·本课题的立题意义与研究内容 | 第20-23页 |
| ·本课题的研究意义 | 第20-21页 |
| ·研究内容 | 第21-23页 |
| 第二章 GOD的固定化及其酶学性质 | 第23-34页 |
| ·材料与仪器 | 第23-24页 |
| ·试剂 | 第23页 |
| ·仪器与设备 | 第23-24页 |
| ·实验方法 | 第24-27页 |
| ·载体预处理方法 | 第24页 |
| ·固定化方法 | 第24-25页 |
| ·酶活力测定方法 | 第25页 |
| ·固定化条件的优化 | 第25页 |
| ·游离和固定化GOD的酶学性质研究 | 第25-27页 |
| ·结果与讨论 | 第27-33页 |
| ·固定化条件的优化 | 第27-29页 |
| ·游离和固定化GOD的酶学性质研究 | 第29-33页 |
| ·小结 | 第33-34页 |
| 第三章 CAT的固定化及其酶学性质 | 第34-45页 |
| ·材料与仪器 | 第34-35页 |
| ·试剂 | 第34页 |
| ·仪器与设备 | 第34-35页 |
| ·实验方法 | 第35-38页 |
| ·树脂处理方法 | 第35页 |
| ·酶活力测定方法 | 第35页 |
| ·固定化方法 | 第35-36页 |
| ·固定化条件的优化 | 第36页 |
| ·固定化CAT的基本酶学性质研究 | 第36-37页 |
| ·同定化CAT、GOD最佳配比 | 第37-38页 |
| ·结果与讨论 | 第38-44页 |
| ·固定化条件的优化 | 第38-41页 |
| ·固定化CAT的酶学性质研究 | 第41-43页 |
| ·固定化CAT、GOD最适配比 | 第43-44页 |
| ·小结 | 第44-45页 |
| 第四章 高纯度低聚果糖的制备 | 第45-59页 |
| ·材料与仪器 | 第45-47页 |
| ·材料与试剂 | 第45-46页 |
| ·仪器与设备 | 第46-47页 |
| ·实验方法 | 第47-49页 |
| ·各组分糖的测定 | 第47页 |
| ·壳聚糖凝胶处理方法 | 第47页 |
| ·种子培养 | 第47页 |
| ·产果糖基转移酶的菌体培养 | 第47-48页 |
| ·FTS的动力学常数 | 第48页 |
| ·FTS的固定化 | 第48页 |
| ·蔗糖为底物单一固定化FTS的反应 | 第48页 |
| ·高含量FOS的制备 | 第48-49页 |
| ·耦联纳滤技术纯化高含量FOS | 第49页 |
| ·结果与讨论 | 第49-58页 |
| ·FTS的动力学常数 | 第49-50页 |
| ·蔗糖为底物单一固定化FTS的反应结果 | 第50-51页 |
| ·高含量FOS的制备 | 第51-52页 |
| ·固定化混合酶系操作稳定性 | 第52-53页 |
| ·耦联纳滤技术制备高含量FOS | 第53-54页 |
| ·纳滤法制备P型FOS的方法比较 | 第54-57页 |
| ·讨论 | 第57-58页 |
| ·小结 | 第58-59页 |
| 第五章 结论与展望 | 第59-61页 |
| ·结论 | 第59-60页 |
| ·展望 | 第60-61页 |
| 参考文献 | 第61-66页 |
| 附录 | 第66-69页 |
| G型FOS分析报告 | 第66-67页 |
| 高含量FOS分析报告 | 第67-68页 |
| P型FOS分析报告 | 第68-69页 |
| 致谢 | 第69-70页 |
| 攻读学位期间发表论文 | 第70页 |
