| 摘要 | 第1-8页 |
| Abstract | 第8-10页 |
| 缩略语表 | 第10-11页 |
| 第一章 文献综述及研究目的和意义 | 第11-20页 |
| 1 鱼、虾类的免疫机制 | 第11-12页 |
| 2 免疫刺激剂的种类与作用 | 第12页 |
| 3 免疫多糖(酵母细胞壁)刺激剂的研究现状 | 第12-15页 |
| ·免疫多糖(酵母细胞壁)的化学结构 | 第12-13页 |
| ·免疫多糖(酵母细胞壁)免疫功能的作用机理 | 第13页 |
| ·免疫多糖(酵母细胞壁)在水产养殖中的应用 | 第13-15页 |
| 4 细胞培养在鱼类免疫学方面的研究现状 | 第15-17页 |
| 5 鱼类淋巴细胞的分离 | 第17-18页 |
| 6 研究目的和意义 | 第18-20页 |
| 第二章 鲫血液淋巴细胞分离条件的初步研究 | 第20-26页 |
| 1 材料与方法 | 第20-22页 |
| ·材料 | 第20-21页 |
| ·试验鱼 | 第20页 |
| ·主要仪器设备 | 第20页 |
| ·主要试剂与配置 | 第20-21页 |
| ·方法 | 第21-22页 |
| ·淋巴细胞分层液的制备 | 第21页 |
| ·鲫外周血淋巴细胞的分离 | 第21-22页 |
| ·细胞计数 | 第22页 |
| 2 结果与分析 | 第22-24页 |
| ·淋巴细胞分离效果 | 第22-23页 |
| ·各分离层血细胞的观察 | 第23-24页 |
| 3 讨论 | 第24-26页 |
| 第三章 MTT试验中最佳波长的测定 | 第26-29页 |
| 1 材料与方法 | 第26-27页 |
| ·材料 | 第26-27页 |
| ·鲫淋巴细胞 | 第26页 |
| ·主要仪器设备 | 第26页 |
| ·主要试剂与配制 | 第26-27页 |
| ·方法 | 第27页 |
| 2 结果 | 第27页 |
| 3 讨论 | 第27-29页 |
| 第四章 鲫淋巴细胞体外转化试验影响因素的研究 | 第29-37页 |
| 1 材料与方法 | 第29-31页 |
| ·材料 | 第29-30页 |
| ·试验鱼 | 第29页 |
| ·主要仪器设备 | 第29页 |
| ·主要试剂与配制 | 第29-30页 |
| ·方法 | 第30-31页 |
| ·鲫淋巴细胞悬液的制备 | 第30页 |
| ·鲫淋巴细胞体外转化增殖的最优条件确定 | 第30-31页 |
| 2 结果与分析 | 第31-34页 |
| ·鲫头肾淋巴细胞体外转化影响因素试验结果 | 第31-32页 |
| ·正交试验结果 | 第31页 |
| ·方差分析 | 第31-32页 |
| ·最优水平组合 | 第32页 |
| ·鲫血液淋巴细胞体外转化影响因素试验结果 | 第32-34页 |
| ·正交试验结果 | 第32页 |
| ·方差分析 | 第32-34页 |
| ·最优水平组合 | 第34页 |
| ·鲫淋巴细胞最适培养条件的确定 | 第34页 |
| 3 讨论 | 第34-37页 |
| ·细胞浓度对鲫淋巴细胞体外培养转化率的影响 | 第34-35页 |
| ·PHA浓度对鲫淋巴细胞体外培养转化率的影响 | 第35页 |
| ·血清添加量对鲫淋巴细胞体外培养转化率的影响 | 第35页 |
| ·培养时间对鲫淋巴细胞体外培养转化率的影响 | 第35-36页 |
| ·小结 | 第36-37页 |
| 第五章 免疫多糖(酵母细胞壁)对鲫淋巴细胞体外培养转化率的影响 | 第37-43页 |
| 1 材料与方法 | 第37-38页 |
| ·材料 | 第37页 |
| ·试验鱼 | 第37页 |
| ·主要仪器设备 | 第37页 |
| ·主要试剂与配制 | 第37页 |
| ·方法 | 第37-38页 |
| ·数据处理 | 第38页 |
| 2 结果与分析 | 第38-40页 |
| ·免疫多糖(酵母细胞壁)对鲫头肾淋巴细胞体外培养转化率的影响 | 第38-39页 |
| ·免疫多糖(酵母细胞壁)对鲫血液淋巴细胞体外培养转化率的影响 | 第39-40页 |
| 3 讨论 | 第40-42页 |
| 4 总结 | 第42-43页 |
| 参考文献 | 第43-53页 |
| 附录1 试验图片 | 第53-54页 |
| 附录2 鲫头肾淋巴细胞体外转化试验影响因素各水平多重比较 | 第54-55页 |
| 附录3 鲫血液淋巴细胞体外转化试验影响因素各水平多重比较 | 第55-56页 |
| 附录4 攻读硕士学位期间发表的论文 | 第56-57页 |
| 致谢 | 第57页 |
