| 中文摘要 | 第1-4页 |
| 英文摘要 | 第4-9页 |
| 第一章 前言 | 第9-21页 |
| ·植物病原细菌 | 第9页 |
| ·植物病原细菌致病相关基因(pathogenicity gene) | 第9-13页 |
| ·hrp基因 | 第9-10页 |
| ·胞外多糖合成的有关基因 | 第10-11页 |
| ·胞外酶合成有关基因 | 第11页 |
| ·无毒基因 | 第11-12页 |
| ·正向控制病原菌寄主范围的基因 | 第12-13页 |
| ·革兰氏阴性细菌的LPS | 第13-18页 |
| ·脂多糖的基本结构和化学组成 | 第14-16页 |
| ·脂多糖的生物合成及与LPS合成有关的基因 | 第16页 |
| ·脂多糖的生物学功能 | 第16-18页 |
| ·茄青枯假单胞菌(Ralstonia solanacearum) | 第18-19页 |
| ·本研究的目的 | 第19-21页 |
| 第二章 材料与方法 | 第21-36页 |
| ·菌株及质粒 | 第21-22页 |
| ·培养基及培养条件 | 第22-24页 |
| ·培养基 | 第22-23页 |
| ·培养条件 | 第23-24页 |
| ·菌体保存 | 第24页 |
| ·抗生素 | 第24页 |
| ·溶液、缓冲液和试剂 | 第24-25页 |
| ·DNA的提取 | 第25-27页 |
| ·质粒DNA的提取 | 第25-26页 |
| ·茄青枯假单胞菌质粒DNA的提取 | 第26-27页 |
| ·茄青枯假单胞菌总DNA的提取 | 第27页 |
| ·DNA沉淀 | 第27-28页 |
| ·DNA溶液中蛋白质及RNA的去除 | 第28页 |
| ·琼脂糖凝胶电泳 | 第28页 |
| ·聚合酶链式反应(PCR) | 第28-30页 |
| ·三亲本接合(triparental conjugation) | 第30页 |
| ·LPS的提取 | 第30页 |
| ·LPS的电泳检测 | 第30-32页 |
| ·LPS SDS-PAGE | 第30-32页 |
| ·LPS显色 | 第32页 |
| ·GUS(β-葡糖苷酸酶)活性检测 | 第32-34页 |
| ·GUS活性检测所需的溶液 | 第32-33页 |
| ·标准曲线的绘制 | 第33页 |
| ·样品的GUS活性测定 | 第33-34页 |
| ·GUS活性组织化学染色 | 第34页 |
| ·GUS活性组织化学染色缓冲液 | 第34页 |
| ·样品的GUS活性组织化学染色 | 第34页 |
| ·茄青枯假单胞菌的致病性检测 | 第34-36页 |
| 第三章 结果与分析 | 第36-54页 |
| ·T2015的ORF3是一个一般的毒性基因 | 第36-40页 |
| ·引言 | 第36-38页 |
| ·茄青枯假单胞菌T2015的ORF3在细菌在不同植株上致病性检测 | 第38-40页 |
| ·完整的LPS在茄青枯假单胞菌致病过程中的作用 | 第40-46页 |
| ·引言 | 第40页 |
| ·T2015等茄青枯假单胞菌在GBM培养基中的生长繁殖 | 第40-42页 |
| ·T2015等茄青枯假单胞菌在含有花生提取物的培养基中的生长繁殖 | 第42-44页 |
| ·ORF3基因在含花生植株提取液培养基中的表达 | 第44-45页 |
| ·ORF3基因在花生植株体内的表达 | 第45-46页 |
| ·茄青枯假单胞菌致病性及脂多糖特性分析 | 第46-49页 |
| ·引言 | 第46页 |
| ·茄青枯假单胞菌的致病性检测 | 第46页 |
| ·脂多糖特性检测 | 第46-48页 |
| ·茄青枯假单胞菌相关特性小结 | 第48-49页 |
| ·单独的ORF3不能使茄青枯假单胞菌M4、P053的致病性增强 | 第49-54页 |
| ·引言 | 第49页 |
| ·将pGX6418分别导入在花生上致病性弱的菌株M4、P053得到接合子M418、T5318 | 第49-50页 |
| ·单独的ORF3不能增强M4、P053在花生上的致病性 | 第50页 |
| ·单独的ORF3不能使M4、P053产生完整的脂多糖结构 | 第50-51页 |
| ·茄青枯假单胞菌的M4、P053 ORF3同源序列分析 | 第51-54页 |
| 第四章 讨论 | 第54-56页 |
| 参考文献 | 第56-63页 |
| 致谢 | 第63-64页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文 | 第64页 |
