| 中文摘要 | 第1-7页 |
| 英文摘要 | 第7-8页 |
| 第一章 文献综述 | 第8-26页 |
| 1．农药残留检测的提取和净化技术 | 第8-12页 |
| 1．1 液-液分离技术 | 第9页 |
| 1．2 固相萃取法 | 第9-10页 |
| 1．3 微型固相提取法 | 第10页 |
| 1．4 微波萃取法 | 第10页 |
| 1．5 超临界流体萃取 | 第10-11页 |
| 1．6 凝胶渗透色谱 | 第11页 |
| 1．7 免疫亲和色谱技术 | 第11-12页 |
| 1．8 加即溶剂提取法 | 第12页 |
| 2．色谱分析技术在农药残留中应用 | 第12-14页 |
| 2．1 薄层色谱法 | 第12页 |
| 2．2 气相色谱法 | 第12-13页 |
| 2．3 液相色谱法 | 第13-14页 |
| 2．4 超临界流体色谱 | 第14页 |
| 3．农药残留生物分析法 | 第14-23页 |
| 3．1 活体生物测定法 | 第14-15页 |
| 3．2 生物化学测定方法 | 第15-16页 |
| 3．3 生物传感器法 | 第16-18页 |
| 3．4．酶联免疫分析法 | 第18-23页 |
| 4．酶联免疫分析方法在拟除虫菊酯类杀虫剂中应用 | 第23-25页 |
| 4．1 除虫菊酯杀虫剂残留现状 | 第23页 |
| 4．2 免疫分析方法在拟除虫菊酯农药残留检测中应用 | 第23-25页 |
| 5．展望 | 第25-26页 |
| 第二章 拟除虫菊酯类农药通用抗体的制备及高效氯氟氰菊酯免疫检测技术研究 | 第26-51页 |
| 1 材料与方法 | 第26-34页 |
| 1．1 试剂 | 第26-27页 |
| 1．2 主要仪器 | 第27-28页 |
| 1．3 人工抗原的制备与鉴定 | 第28-29页 |
| 1．4 抗体制备和抗血清筛选及特性考察 | 第29-31页 |
| 1．5 高效氯氟氰菊酯ELISA检测方法建立 | 第31-34页 |
| 2．结果与分析 | 第34-47页 |
| 2．1 人工抗原的偶联情况鉴定结果 | 第35-36页 |
| 2．2 抗体制备和抗血清筛选及特性考察结果 | 第36-39页 |
| 2．2．1 抗血清滴度测定结果 | 第36页 |
| 2．2．2 抗血清特异性测定结果 | 第36-38页 |
| 2．2．3 有机溶剂对抗血清的影响的结果 | 第38-39页 |
| 2．3 高效氯氟氰菊酯ELISA检测方法建立 | 第39-47页 |
| 2．3．1 抗血清工作浓度确定的结果 | 第39页 |
| 2．3．2 包被缓冲液对抗原结合率的影响结果 | 第39页 |
| 2．3．3 盐离子浓度对ELISA检测结果的影响 | 第39-41页 |
| 2．3．4 有机溶剂对竞争ELISA检测的优化结果 | 第41-43页 |
| 2．3．5 pH值对ELISA检测检测的影响 | 第43-44页 |
| 2．3．6 封闭液对ELISA检测的影响 | 第44页 |
| 2．3．7 二抗对ELISA检测结果的影响 | 第44-45页 |
| 2．3．8 高效氯氟氰菊酯ELISA检测的标准曲线 | 第45-46页 |
| 2．3．9 高效氯氟氰菊酯ELISA检测的标准曲线精确度 | 第46-47页 |
| 3．讨论 | 第47-51页 |
| 3．1 人工抗原的选择与制备 | 第47页 |
| 3．2 抗血清滴度、最佳工作浓度的问题 | 第47-48页 |
| 3．3 有机溶剂对抗体的影响 | 第48页 |
| 3．4 抗体特异性研究问题 | 第48-49页 |
| 3．5 有关高效氯氟氰菊酯ELISA检测的各种因素问题 | 第49-50页 |
| 3．6 标准曲线检测与目前常规检测应用方法的比较 | 第50-51页 |
| 参考文献 | 第51-58页 |
| 附录 | 第58-61页 |
| 致谢 | 第61页 |
