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巨大芽孢杆菌来源的β-淀粉酶在枯草芽杆菌中的重组表达及应用研究

摘要第5-7页
Abstract第7-9页
第一章 绪论第14-28页
    1.1 淀粉及淀粉酶第14-16页
        1.1.1 淀粉的结构及特性第14-15页
        1.1.2 淀粉酶第15-16页
    1.2 β-淀粉酶第16-20页
        1.2.1 β-淀粉酶来源第16页
        1.2.2 β-淀粉酶结构与催化机理第16-17页
        1.2.3 β-淀粉酶酶活的测定方法第17-18页
        1.2.4 β-淀粉酶的应用第18-19页
        1.2.5 微生物来源的β-淀粉酶重组表达研究进展第19-20页
    1.3 枯草芽孢杆菌基因表达系统概述第20-23页
        1.3.1 枯草芽孢杆菌表达系统第20-21页
        1.3.2 枯草芽孢杆菌表达系统的控制元件第21-23页
    1.4 枯草芽孢杆菌碳分解代谢物阻遏效应第23-25页
        1.4.1 细菌磷酸烯醇式丙酮酸-糖磷酸转移酶系统转运机制第24页
        1.4.2 碳分解代谢物阻遏效应的机制第24-25页
    1.5 论文研究的主要内容及意义第25-28页
        1.5.1 研究意义第25-26页
        1.5.2 研究内容第26-28页
第二章 β-淀粉酶在枯草芽孢杆菌系统中高效表达第28-57页
    2.1 引言第28页
    2.2 实验材料第28-32页
        2.2.1 菌种与质粒第28-29页
        2.2.2 引物序列第29页
        2.2.3 试剂与试剂盒第29-30页
        2.2.4 培养基第30-31页
        2.2.5 主要仪器与设备第31-32页
    2.3 实验方法第32-44页
        2.3.1 pBE-Amy M载体的构建第32-34页
        2.3.2 pBE-Amy M质粒转化大肠杆菌克隆及验证第34-36页
        2.3.3 单启动子pBE-promoter-Amy M表达载体的构建第36-37页
        2.3.4 pBE-promoter-Amy M质粒的克隆与验证第37-38页
        2.3.5 含有单启动子质粒在枯草芽孢杆菌中的转化第38-40页
        2.3.6 β-淀粉酶的酶活力测定第40页
        2.3.7 单启动子重组菌株酶活水平测定第40-41页
        2.3.8 双启动子pBE-P43-promoter-Amy M表达载体的构建第41-42页
        2.3.9 pBE-P43-promoter-Amy M质粒的克隆与验证第42页
        2.3.10 双启动子重组质粒在枯草芽孢杆菌中的转化、验证及发酵第42页
        2.3.11 双启动子重组菌株酶活水平测定第42页
        2.3.12 突变型Amy M-CRE重组质粒的构建第42-43页
        2.3.13 突变型Amy M-CRE重组质粒在宿主中的转化第43页
        2.3.14 突变型Amy M-CRE重组菌株摇瓶发酵及酶活测定第43-44页
    2.4 实验结果与讨论第44-55页
        2.4.1 β-淀粉酶基因生物信息分析第44-45页
        2.4.2 β-淀粉酶基因和pBE载体片段的扩增与验证第45-46页
        2.4.3 载体pBE-Amy M构建、克隆与验证第46-47页
        2.4.4 单启动子pBE-promoter-Amy M表达载体的构建与验证第47-49页
        2.4.5 单启动子质粒转化宿主B.subtilis ATCC6051?10 的验证第49页
        2.4.6 单启动子对β-淀粉酶表达水平的影响第49-51页
        2.4.7 双启动子pBE-P43-Promoter-Amy M质粒的构建与验证第51-52页
        2.4.8 双启动子对β-淀粉酶表达水平的影响第52-53页
        2.4.9 突变型Amy M-CRE重组载体的构建、克隆与转化第53-54页
        2.4.10 缓解CCR效应对重组菌株β-淀粉酶酶活水平的影响第54-55页
    2.5 本章小结第55-57页
第三章 发酵菌株摇瓶培养条件的优化第57-67页
    3.1 引言第57页
    3.2 实验材料第57-58页
        3.2.1 菌种第57页
        3.2.2 试剂与培养基第57页
        3.2.3 主要仪器与设备第57-58页
    3.3 实验方法第58-59页
        3.3.1 生长曲线的测定第58页
        3.3.2 发酵培养基成份的优化第58页
        3.3.3 发酵不同条件的优化第58-59页
    3.4 实验结果与讨论第59-65页
        3.4.1 生长曲线的绘制第59页
        3.4.2 培养基成份的优化第59-64页
        3.4.3 摇瓶培养条件的优化第64-65页
    3.5 本章小结第65-67页
第四章 重组β-淀粉酶纯化、酶学性质及应用效果研究第67-79页
    4.1 引言第67页
    4.2 实验材料第67-68页
        4.2.1 菌种与质粒第67页
        4.2.2 试剂第67页
        4.2.3 培养基第67-68页
        4.2.4 主要仪器与设备第68页
    4.3 实验方法第68-72页
        4.3.1 重组β-淀粉酶的纯化和蛋白含量的测定第68-69页
        4.3.2 重组β-淀粉酶SDS-PAGE蛋白电泳及Western blot分析第69-70页
        4.3.3 重组β-淀粉酶的酶学性质分析第70-71页
        4.3.4 重组β-淀粉酶在糖化反应过程中的应用第71-72页
    4.4 实验结果与讨论第72-78页
        4.4.1 重组β-淀粉酶的亲和层析纯化第72-73页
        4.4.2 重组β-淀粉酶酶学性质分析第73-76页
        4.4.3 重组β-淀粉酶在糖化过程的应用效果第76-78页
    4.5 本章小结第78-79页
结论与展望第79-81页
    结论第79-80页
    展望第80-81页
本论文创新点第81-82页
参考文献第82-91页
附录第91-95页
攻读硕士学位期间取得的研究成果第95-96页
致谢第96-98页
附件第98页

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