| 摘要 | 第1-9页 |
| Abstract | 第9-13页 |
| 引言 | 第13-15页 |
| 第一章 绪论 | 第15-32页 |
| ·病原学 | 第15-16页 |
| ·流行病学 | 第16-17页 |
| ·临床症状及病理变化 | 第17-19页 |
| ·断奶仔猪多系统衰竭综合征(PMWS) | 第17-18页 |
| ·猪皮炎肾病综合征(PDNS) | 第18-19页 |
| ·分子生物学特征 | 第19-22页 |
| ·PCV2的基因组结构 | 第19-20页 |
| ·猪圆环病毒的转录与复制 | 第20-22页 |
| ·致病机理 | 第22-25页 |
| ·PCV2在体内的分布及影响 | 第22-24页 |
| ·PCV2感染对细胞因子的影响 | 第24-25页 |
| ·诊断 | 第25-28页 |
| ·病毒分离鉴定 | 第25页 |
| ·免疫组织化学技术 | 第25-26页 |
| ·PCR技术 | 第26-28页 |
| ·猪圆环病毒基因工程疫苗的研究 | 第28-29页 |
| ·核酸疫苗 | 第28-29页 |
| ·重组疫苗 | 第29页 |
| ·活载体疫苗 | 第29页 |
| ·防治 | 第29-32页 |
| ·加强饲养管理 | 第30页 |
| ·做好疫苗接种和抗体检测 | 第30页 |
| ·减少应激 | 第30页 |
| ·定期保健,减少疾病发生 | 第30-32页 |
| 第二章 猪圆环病毒Ⅱ型DNA疫苗构建及对小鼠的免疫效果 | 第32-44页 |
| ·材料 | 第33-35页 |
| ·细胞株和质粒 | 第33页 |
| ·实验动物和细菌 | 第33页 |
| ·主要试剂和试剂盒 | 第33页 |
| ·主要溶液的配制 | 第33-35页 |
| ·主要仪器设备 | 第35页 |
| ·方法 | 第35-41页 |
| ·DNA疫苗构建与鉴定 | 第35-38页 |
| ·RT-PCR方法鉴定表达产物 | 第38-40页 |
| ·DNA疫苗免疫小鼠及免疫效果测定 | 第40-41页 |
| ·结果 | 第41-42页 |
| ·DNA疫苗构建与鉴定结果 | 第41页 |
| ·DNA疫苗瞬时转染后表达产物的RT-PCR检测结果 | 第41-42页 |
| ·DNA核酸疫苗免疫小鼠后血清中PCV2抗体的测定值 | 第42页 |
| ·核酸疫苗的安全性测定 | 第42页 |
| ·讨论 | 第42-44页 |
| 第三章 猪圆环病毒Ⅱ型间接ELISA方法的建立 | 第44-52页 |
| ·材料 | 第44-45页 |
| ·细菌和重组质粒 | 第44页 |
| ·血清和试剂 | 第44-45页 |
| ·仪器设备 | 第45页 |
| ·ELISA所用的溶液 | 第45页 |
| ·方法 | 第45-47页 |
| ·包被抗原的制备 | 第45-46页 |
| ·间接ELISA操作步骤 | 第46页 |
| ·抗原的最适包被浓度和兔抗猪IgG最适工作浓度的确定 | 第46-47页 |
| ·待检血清稀释度的选择 | 第47页 |
| ·判定标准 | 第47页 |
| ·特异性试验 | 第47页 |
| ·重复性试验 | 第47页 |
| ·建立的间接ELISA方法与韩国JBT的PCV2试剂盒的比较 | 第47页 |
| ·临床样品血清的检测 | 第47页 |
| ·结果 | 第47-50页 |
| ·抗原的最适包被浓度和兔抗猪IgG最适工作浓度的选择 | 第47-48页 |
| ·待检血清稀释度的确定 | 第48页 |
| ·判定标准的确定 | 第48-49页 |
| ·间接ELISA方法特异性试验 | 第49页 |
| ·间接ELISA方法重复性测定 | 第49-50页 |
| ·间接ELISA方法与韩国JBT的PCV2试剂盒的符合率比较 | 第50页 |
| ·间接ELISA检测临床样品 | 第50页 |
| ·讨论 | 第50-52页 |
| 第四章 总结 | 第52-53页 |
| 致谢 | 第53-54页 |
| 参考文献 | 第54-62页 |
