| 摘要 | 第5-8页 |
| ABSTRACT | 第8-10页 |
| 第一章 前言 | 第13-30页 |
| 1.1 海参多糖的研究概况 | 第13-16页 |
| 1.1.1 海参多糖的研究历程 | 第13-14页 |
| 1.1.2 海参酸性多糖提取及除杂 | 第14-15页 |
| 1.1.3 海参酸性多糖分离纯化研究 | 第15页 |
| 1.1.4 多糖结构研究的一般方法 | 第15-16页 |
| 1.2 FG的化学结构 | 第16-22页 |
| 1.3 FS的化学结构 | 第22-25页 |
| 1.4 海参多糖药理活性研究现状 | 第25-28页 |
| 1.4.1 FG药理活性研究现状 | 第26-27页 |
| 1.4.2 FS药理活性研究现状 | 第27-28页 |
| 1.5 本研究的目的、内容及意义 | 第28-30页 |
| 第二章 球参多糖的分离纯化及理化性质研究 | 第30-47页 |
| 2.1 材料与仪器 | 第30-31页 |
| 2.1.1 实验材料 | 第30-31页 |
| 2.1.2 仪器设备 | 第31页 |
| 2.2 实验方法 | 第31-37页 |
| 2.2.1 粗多糖的提取 | 第33页 |
| 2.2.2 球参多糖的纯化 | 第33-34页 |
| 2.2.3 分子量及其分布测定 | 第34页 |
| 2.2.4 OSO_3~-/COO~-摩尔比 | 第34页 |
| 2.2.5 OSO_3~-含量测定 | 第34-35页 |
| 2.2.6 单糖组成测定 | 第35-36页 |
| 2.2.7 特性粘度 | 第36页 |
| 2.2.8 旋光度 | 第36页 |
| 2.2.9 几种糖的红外光谱(IR)分析 | 第36页 |
| 2.2.10 核磁共振波谱(NMR) | 第36-37页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第37-45页 |
| 2.3.1 球参多糖的分离纯化结果 | 第37-38页 |
| 2.3.2 几种糖的OSO_3~-/COO~-摩尔比结果 | 第38-39页 |
| 2.3.3 OSO_3~-含量测定标准曲线 | 第39页 |
| 2.3.4 单糖组成分析结果 | 第39-40页 |
| 2.3.5 红外吸收光谱(IR)分析 | 第40-43页 |
| 2.3.6 核磁共振波谱(NMR)分析 | 第43-45页 |
| 2.4 小结 | 第45-47页 |
| 第三章 岩藻糖化糖胺聚糖寡糖片段及低聚岩藻聚糖的制备与结构解析 | 第47-73页 |
| 3.1 实验材料和仪器 | 第47-48页 |
| 3.1.1 材料 | 第47-48页 |
| 3.2 实验方法 | 第48-50页 |
| 3.2.1 含末端anTal-ol的dFG制备及分离纯化 | 第48页 |
| 3.2.2 FS过氧化氢解聚 | 第48-49页 |
| 3.2.3 解聚产物的NMR分析 | 第49-50页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第50-71页 |
| 3.3.1 FG寡糖片段分离纯化 | 第50-51页 |
| 3.3.2 PPP-1b过氧化氢解聚结果 | 第51-52页 |
| 3.3.3 含末端anTal-ol的纯化寡糖结构分析 | 第52-67页 |
| 3.3.4 dPPP-1b的NMR谱图及初步结构分析 | 第67-71页 |
| 3.4 小结 | 第71-73页 |
| 第四章 球参多糖的抗氧化活性 | 第73-80页 |
| 4.1 材料、试剂及仪器 | 第73-74页 |
| 4.2 实验方法 | 第74-76页 |
| 4.2.1 清除DPPH自由基 | 第74页 |
| 4.2.2 清除羟基自由基 | 第74-75页 |
| 4.2.3 清除超氧阴离子自由基 | 第75页 |
| 4.2.4 清除ABTS自由基 | 第75-76页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第76-79页 |
| 4.3.1 清除DPPH自由基 | 第76页 |
| 4.3.2 清除羟基自由基 | 第76-77页 |
| 4.3.3 清除超氧阴离子自由基 | 第77-78页 |
| 4.3.4 清除ABTS自由基 | 第78-79页 |
| 4.4 小结 | 第79-80页 |
| 结论 | 第80-83页 |
| 参考文献 | 第83-94页 |
| 攻读学位期间主要研究成果 | 第94-95页 |
| 致谢 | 第95-96页 |
