| 缩略语表 | 第6-10页 |
| 中文摘要 | 第10-16页 |
| 英文摘要 | 第16-23页 |
| 前言 | 第24-27页 |
| 文献回顾 | 第27-51页 |
| 第一部分 不同频段EMF发生装置的研制 | 第51-58页 |
| 引言 | 第51页 |
| 1 材料 | 第51-52页 |
| 2 系统设计 | 第52页 |
| 3 具体实施方式 | 第52-57页 |
| 4 测试 | 第57页 |
| 5 讨论 | 第57-58页 |
| 第二部分 不同频段EMF对小鼠MC3T3-E1成骨前体细胞增殖和分化成熟的影响·· | 第58-84页 |
| 引言 | 第58-59页 |
| 1 材料 | 第59-62页 |
| 1.1 实验细胞 | 第59页 |
| 1.2 主要仪器 | 第59-60页 |
| 1.3 主要试剂及耗材 | 第60-62页 |
| 2 方法 | 第62-70页 |
| 2.1 MC3T3-E1细胞培养与传代 | 第62-63页 |
| 2.2 EMF干预方案 | 第63页 |
| 2.3 细胞增殖测定 | 第63页 |
| 2.4 碱性磷酸酶(ALP)活性测定 | 第63页 |
| 2.5 成骨相关基因表达 | 第63-67页 |
| 2.6 成骨相关蛋白表达 | 第67-70页 |
| 2.7 统计分析 | 第70页 |
| 3 结果 | 第70-80页 |
| 3.1 EMF对MC3T3-E1细胞增殖的影响 | 第70-71页 |
| 3.2 EMF对MC3T3-E1细胞分化的影响 | 第71-72页 |
| 3.3 成骨相关基因表达 | 第72-76页 |
| 3.4 成骨相关蛋白表达 | 第76-80页 |
| 4 讨论 | 第80-84页 |
| 第三部分 不同频段EMF对RANKL诱导小鼠RAW264.7破骨前体细胞增殖和分化成熟的影响 | 第84-98页 |
| 引言 | 第84页 |
| 1 材料 | 第84-88页 |
| 1.1 实验细胞 | 第84-85页 |
| 1.2 主要仪器 | 第85页 |
| 1.3 主要试剂及耗材 | 第85-88页 |
| 2 方法 | 第88-90页 |
| 2.1 RAW264.7细胞培养与传代 | 第88页 |
| 2.2 EMF干预方案 | 第88页 |
| 2.3 细胞增殖测定 | 第88页 |
| 2.4 凋亡测定 | 第88-89页 |
| 2.5 抗酒石酸酸性磷酸酶(TRAP)染色 | 第89页 |
| 2.6 细胞骨架染色 | 第89-90页 |
| 2.7 破骨相关蛋白表达 | 第90页 |
| 2.8 统计分析 | 第90页 |
| 3 结果 | 第90-97页 |
| 3.1 EMF对RANKL诱导的OCs增殖的影响 | 第90-91页 |
| 3.2 EMF对RANKL诱导的OCs凋亡的影响 | 第91-93页 |
| 3.3 TRAP染色 | 第93-94页 |
| 3.4 细胞骨架染色 | 第94-96页 |
| 3.5 EMF对破骨相关蛋白的影响 | 第96-97页 |
| 4 讨论 | 第97-98页 |
| 第四部分 不同频段EMF对卵巢摘除小鼠骨质疏松的影响 | 第98-125页 |
| 引言 | 第98-99页 |
| 1 材料 | 第99-101页 |
| 1.1 实验动物 | 第99页 |
| 1.2 主要仪器 | 第99-100页 |
| 1.3 主要试剂及耗材 | 第100-101页 |
| 2 方法 | 第101-106页 |
| 2.1 OVX造模和EMF干预方案 | 第101-102页 |
| 2.2 整体实验设计 | 第102-103页 |
| 2.3 血清生化分析 | 第103页 |
| 2.4 生物力学检测 | 第103页 |
| 2.5 μCT扫描分析 | 第103-104页 |
| 2.6 骨小梁组织形态学分析 | 第104页 |
| 2.7 实时荧光定量PCR | 第104-105页 |
| 2.8 统计分析 | 第105-106页 |
| 3 结果 | 第106-120页 |
| 3.1 EMF对体重的影响 | 第106-107页 |
| 3.2 血清生化分析 | 第107-109页 |
| 3.3 生物力学特性 | 第109-110页 |
| 3.4 μCT扫描分析 | 第110-114页 |
| 3.5 骨小梁组织形态学分析 | 第114-116页 |
| 3.6 实时荧光定量PCR | 第116-120页 |
| 4 讨论 | 第120-125页 |
| 小结 | 第125-127页 |
| 参考文献 | 第127-142页 |
| 个人简历和研究成果 | 第142-144页 |
| 致谢 | 第144页 |
