摘要 | 第5-7页 |
abstract | 第7-9页 |
第1章 绪论 | 第13-25页 |
1.1 文蛤的生物学及养殖现状 | 第13-14页 |
1.2 贝类抗性免疫研究进展 | 第14-16页 |
1.2.1 贝类细胞免疫 | 第14页 |
1.2.2 贝类体液免疫 | 第14-16页 |
1.2.3 抗性与载菌量 | 第16页 |
1.3 生物体内内生微生物研究进展 | 第16-19页 |
1.3.1 内生微生物的组成及功能 | 第16-18页 |
1.3.2 内生微生物研究方法 | 第18-19页 |
1.4 免疫防御与细胞凋亡 | 第19-23页 |
1.4.1 细胞凋亡的特征及功能 | 第19-21页 |
1.4.2 细胞凋亡相关基因 | 第21-22页 |
1.4.3 细胞凋亡与病原菌感染 | 第22-23页 |
1.5 本研究的目的和意义 | 第23-25页 |
第2章 副溶血弧菌攻毒过程中文蛤肝胰腺弧菌载量变化的分析.. | 第25-41页 |
2.1 研究背景 | 第25-26页 |
2.2 材料与方法 | 第26-28页 |
2.2.1 实验群体 | 第26页 |
2.2.2 细菌培养 | 第26-27页 |
2.2.3 副溶血弧菌攻毒实验 | 第27页 |
2.2.4 副溶血弧菌数量检测 | 第27-28页 |
2.2.5 弧菌种类检测 | 第28页 |
2.2.6 数据分析 | 第28页 |
2.3 结果 | 第28-37页 |
2.3.1 副溶血弧菌TCBS检测 | 第28-33页 |
2.3.2 攻毒水体中弧菌含量的日变化 | 第33-34页 |
2.3.3 副溶血弧菌攻毒过程中文蛤体内载菌量变化 | 第34-35页 |
2.3.4 不同攻毒强度下文蛤体内的副溶血弧菌载量及死亡率 | 第35-37页 |
2.4 讨论 | 第37-39页 |
2.5 小结 | 第39-41页 |
第3章 副溶血弧菌感染后文蛤肝胰腺微生物群落结构变化 | 第41-63页 |
3.1 研究背景 | 第41-43页 |
3.2 材料与方法 | 第43-46页 |
3.2.1 实验动物及样本采集 | 第43页 |
3.2.2 基因组DNA的提取 | 第43页 |
3.2.3 16S rDNA高变区域PCR扩增和产物纯化 | 第43-44页 |
3.2.4 文库构建和上机测序 | 第44页 |
3.2.5 测序数据处理 | 第44-45页 |
3.2.6 OTU聚类和物种注释 | 第45页 |
3.2.7 样品复杂度分析(Alpha Diversity) | 第45-46页 |
3.2.8 多样品比较分析(Beta Diversity) | 第46页 |
3.3 结果 | 第46-59页 |
3.3.1 弧菌感染后文蛤死亡率 | 第46-47页 |
3.3.2 OUT分析和物种注释 | 第47-49页 |
3.3.3 文蛤肝胰腺微生物组成分布情况 | 第49-53页 |
3.3.4 在弧菌感染过程中文蛤肝胰腺微生物群落组成的变化 | 第53-55页 |
3.3.5 弧菌感染的影响和指示类群的变化 | 第55-59页 |
3.4 讨论 | 第59-60页 |
3.5 小结 | 第60-63页 |
第4章 文蛤凋亡相关基因在副溶血弧菌刺激下的表达量变化 | 第63-79页 |
4.1 研究背景 | 第63-64页 |
4.2 材料与方法 | 第64-68页 |
4.2.1 弧菌攻毒和样品收集 | 第64-65页 |
4.2.2 RNA提取和cDNA合成 | 第65-66页 |
4.2.3 文蛤MpBax基因c DNA克隆与序列分析 | 第66-67页 |
4.2.4 基因的表达分析 | 第67页 |
4.2.5 实验引物 | 第67-68页 |
4.3 结果 | 第68-74页 |
4.3.1 MpBax基因的序列分析 | 第68-70页 |
4.3.2 MpBax基因的组织表达分析 | 第70页 |
4.3.3 弧菌刺激后的MpBax表达量变化 | 第70-71页 |
4.3.4 MpBcl-xL基因的序列分析 | 第71-72页 |
4.3.5 弧菌刺激后的MpBcl-xL表达量变化 | 第72-73页 |
4.3.6 MpBcl-w基因的序列分析 | 第73页 |
4.3.7 弧菌刺激后的MpBcl-w表达量变化 | 第73-74页 |
4.4 讨论 | 第74-76页 |
4.5 小结 | 第76-79页 |
结论 | 第79-81页 |
参考文献 | 第81-93页 |
致谢 | 第93-95页 |
作者简历及攻读学位期间发表的学术论文与研究成果 | 第95页 |