| 中文摘要 | 第8-10页 |
| Abstract | 第10-12页 |
| List of Abbreviations | 第20-22页 |
| 第一章 前言 | 第22-59页 |
| 1.1 有机荧光探针分子 | 第23-41页 |
| 1.1.1 荧光发射机制 | 第23-24页 |
| 1.1.2 荧光探针的设计机制 | 第24-27页 |
| 1.1.3 硫化氢荧光探针 | 第27-36页 |
| 1.1.4 硫化氢/过氧化氢探针 | 第36-38页 |
| 1.1.5 次氯酸荧光探针 | 第38-41页 |
| 1.2 光动力治疗 | 第41-46页 |
| 1.2.1 光敏剂的发展 | 第43-44页 |
| 1.2.2 线粒体靶向光敏剂 | 第44-46页 |
| 1.3 论文立题依据 | 第46-47页 |
| 参考文献 | 第47-59页 |
| 第二章 H_2S-H_2O_2交互响应的荧光探针设计 | 第59-83页 |
| 2.1 引论 | 第59-61页 |
| 2.2 实验与方法 | 第61-71页 |
| 2.2.1 实验仪器与试剂 | 第61-62页 |
| 2.2.2 合成部分 | 第62-69页 |
| 2.2.3 光谱分析 | 第69页 |
| 2.2.4 UPLC分析 | 第69页 |
| 2.2.5 光化学、热化学分析实验 | 第69-70页 |
| 2.2.6 NO_2ArSSi光解分析实验 | 第70页 |
| 2.2.7 荧光量子产率的测定 | 第70页 |
| 2.2.8 细胞培养 | 第70页 |
| 2.2.9 激光共聚焦显微镜(CLSM)观察 | 第70-71页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第71-81页 |
| 2.3.1 “把手”分子NB-PMP响应荧光产物结构确认 | 第71-72页 |
| 2.3.2 响应机制的研究 | 第72-76页 |
| 2.3.3 “把手”分子NB-PMP光谱响应 | 第76-77页 |
| 2.3.4 “把手”分子NB-PMP UPLC响应 | 第77-79页 |
| 2.3.5 TPP-NB-PMP探针分子的构建与荧光响应 | 第79-80页 |
| 2.3.6 TPP-NB-PMP探针分子的细胞成像研究 | 第80-81页 |
| 2.4 小结 | 第81页 |
| 参考文献 | 第81-83页 |
| 第三章 基于TBET机制的H_2S-H_2O_2交互响应探针研究 | 第83-101页 |
| 3.1 引论 | 第83-84页 |
| 3.2 实验与方法 | 第84-91页 |
| 3.2.1 实验仪器与试剂 | 第84-85页 |
| 3.2.2 探针分子的合成 | 第85-89页 |
| 3.2.3 UPLC分析 | 第89页 |
| 3.2.4 Mito-1和Mito-2探针选择性分析 | 第89页 |
| 3.2.5 荧光量子产率测定 | 第89-90页 |
| 3.2.6 计算方法 | 第90页 |
| 3.2.7 MTT分析 | 第90页 |
| 3.2.8 CLSM成像 | 第90-91页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第91-99页 |
| 3.3.1 探针分子的合成 | 第91页 |
| 3.3.2 探针分子的荧光响应 | 第91-93页 |
| 3.3.3 Mito-1和Mito-2响应选择性分析 | 第93-95页 |
| 3.3.4 Mito-1响应过程UPLC分析 | 第95页 |
| 3.3.5 Mito-1响应的理论计算 | 第95-96页 |
| 3.3.6 探针分子的定位性验证 | 第96-97页 |
| 3.3.7 探针分子细胞成像实验 | 第97-99页 |
| 3.4 小结 | 第99页 |
| 参考文献 | 第99-101页 |
| 第四章 基于S-烷基代氨基甲酸酯氧化水解的次氯酸探针研究 | 第101-122页 |
| 4.1 引论 | 第101-103页 |
| 4.2 实验与方法 | 第103-106页 |
| 4.2.1 实验仪器与试剂 | 第103-104页 |
| 4.2.2 探针分子及其类似物的合成 | 第104-105页 |
| 4.2.3 UPLC分析 | 第105页 |
| 4.2.4 检测选择性分析 | 第105页 |
| 4.2.5 细胞培养 | 第105-106页 |
| 4.2.6 MTT分析 | 第106页 |
| 4.2.7 CLSM成像 | 第106页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第106-119页 |
| 4.3.1 MBTC的合成 | 第106-108页 |
| 4.3.2 MBTC紫外荧光响应 | 第108-109页 |
| 4.3.3 MBTC响应UPLC分析 | 第109-110页 |
| 4.3.4 MBTC响应选择性分析 | 第110-114页 |
| 4.3.5 MBTC响应机制探讨 | 第114-117页 |
| 4.3.6 MBTC外源性HOCl检测 | 第117-118页 |
| 4.3.7 MBTC内源性HOCl检测 | 第118-119页 |
| 4.4 小结 | 第119-120页 |
| 参考文献 | 第120-122页 |
| 第五章 线粒体靶向D-A-D型光敏的合成与应用 | 第122-147页 |
| 5.1 引论 | 第122-124页 |
| 5.2 实验与方法 | 第124-131页 |
| 5.2.1 实验仪器与试剂 | 第124-125页 |
| 5.2.2 Mito-DAD的合成 | 第125-128页 |
| 5.2.3 荧光量子产率的测定 | 第128页 |
| 5.2.4 单线态量子产率的测定 | 第128-129页 |
| 5.2.5 细胞培养条件 | 第129页 |
| 5.2.6 细胞内活性氧(ROS)的测定 | 第129页 |
| 5.2.7 正常氧浓度的细胞存活测试 | 第129-130页 |
| 5.2.8 乏氧条件下的细胞存活测试 | 第130页 |
| 5.2.9 激光共聚焦成像 | 第130页 |
| 5.2.10 JC-1染色实验 | 第130-131页 |
| 5.2.11 活细胞死细胞染色实验 | 第131页 |
| 5.2.12 双光子光动力测试 | 第131页 |
| 5.3 结果与讨论 | 第131-144页 |
| 5.3.1 Br-DAD和Mito-DAD的合成 | 第131-132页 |
| 5.3.2 Br-DAD和Mito-DAD光谱性质表征 | 第132-134页 |
| 5.3.3 Mito-DAD相对单线态量子产率的表征 | 第134-136页 |
| 5.3.4 Mito-DAD靶向线粒体能力 | 第136-137页 |
| 5.3.5 细胞内活性氧(ROS)产生测定 | 第137-138页 |
| 5.3.6 线粒体膜电势变化 | 第138-140页 |
| 5.3.7 细胞存活测试 | 第140-142页 |
| 5.3.8 活细胞/死细胞染色实验 | 第142-143页 |
| 5.3.9 双光子光动力治疗 | 第143-144页 |
| 5.4 小结 | 第144-145页 |
| 参考文献 | 第145-147页 |
| 第六章 总结与展望 | 第147-150页 |
| 博士期间已发表和待发表论文 | 第150-152页 |
| 致谢 | 第152-153页 |
