| 摘要 | 第3-6页 |
| Abstract | 第6-9页 |
| 引言 | 第14-18页 |
| 1.1 胆囊癌的流行病学特征与临床特点 | 第14页 |
| 1.2 胆囊癌的治疗现状 | 第14-16页 |
| 1.3 阿帕替尼的药物作用机制及应用 | 第16-18页 |
| 材料与方法 | 第18-25页 |
| 材料 | 第18-19页 |
| 2.1 细胞株与动物 | 第18页 |
| 2.2 实验耗材 | 第18-19页 |
| 2.3 实验仪器与设备 | 第19页 |
| 方法 | 第19-25页 |
| 2.4 人胆囊癌细胞GBC-SD的培养 | 第19-21页 |
| 2.4.1 细胞的复苏 | 第19-20页 |
| 2.4.2 细胞的传代与维持 | 第20页 |
| 2.4.3 细胞的冻存 | 第20-21页 |
| 2.5 人胆囊癌GBC-SD细胞裸鼠移植瘤模型的建立 | 第21-22页 |
| 2.5.1 裸鼠的饲养 | 第21页 |
| 2.5.2 细胞的接种 | 第21页 |
| 2.5.3 裸鼠的分组 | 第21-22页 |
| 2.5.4 裸鼠的给药与监测 | 第22页 |
| 2.5.5 裸鼠移植瘤组织的提取 | 第22页 |
| 2.6 免疫组化检测移植瘤组织CD31、Ki67和VEGFR-2的表达量 | 第22-24页 |
| 2.6.1 石蜡切片的制备 | 第22-23页 |
| 2.6.2 常规HE染色 | 第23页 |
| 2.6.3 免疫组化检测CD31、Ki67和VEGFR-2的表达量 | 第23-24页 |
| 2.7 统计学分析 | 第24-25页 |
| 结果 | 第25-34页 |
| 3.1 胆囊癌GBC-SD细胞的培养 | 第25页 |
| 3.2 成功构建人胆囊癌GBC-SD移植瘤模型 | 第25-26页 |
| 3.3 人胆囊癌GBC-SD裸鼠移植瘤HE染色结果 | 第26页 |
| 3.4 阿帕替尼对人胆囊癌GBC-SD裸鼠移植瘤的抑制作用 | 第26-29页 |
| 3.4.1 阿帕替尼对人胆囊癌GBC-SD裸鼠移植瘤体积的抑制 | 第26-28页 |
| 3.4.2 阿帕替尼对人胆囊癌GBC-SD裸鼠移植瘤相对肿瘤增长率的影响 | 第28页 |
| 3.4.3 阿帕替尼治疗人胆囊癌GBC-SD裸鼠移植瘤的相关不良反应观察 | 第28-29页 |
| 3.5 阿帕替尼对人胆囊癌GBC-SD裸鼠移植瘤血管生成的影响 | 第29-34页 |
| 3.5.1 阿帕替尼对人胆囊癌GBC-SD裸鼠移植瘤微血管密度的影响 | 第29-30页 |
| 3.5.2 阿帕替尼对人胆囊癌GBC-SD裸鼠移植瘤肿瘤增殖的影响 | 第30-31页 |
| 3.5.3 阿帕替尼对人胆囊癌GBC-SD裸鼠移植瘤VEGFR 2表达的影响 | 第31-34页 |
| 讨论 | 第34-37页 |
| 结论 | 第37-38页 |
| 参考文献 | 第38-41页 |
| 附录2 攻读学位期间主要科研工作 | 第41-42页 |
| 附录3 研究生期间论文发表情况 | 第42-43页 |
| 综述 | 第43-53页 |
| 参考文献 | 第49-53页 |
| 缩略词表 | 第53-54页 |
| 致谢 | 第54-55页 |
