| 摘要 | 第4-7页 |
| ABSTRACT | 第7-9页 |
| 英文缩略词表(ABBREVIATION) | 第12-14页 |
| 引言 | 第14-16页 |
| 1 材料与方法 | 第16-38页 |
| 1.1 实验动物 | 第16页 |
| 1.1.1 动物饲料和动物造模试剂 | 第16页 |
| 1.2 实验试剂 | 第16-20页 |
| 1.2.1 蛋白检测所用试剂盒 | 第16页 |
| 1.2.2 组织细胞TG测定试剂盒 | 第16-17页 |
| 1.2.3 酶联免疫吸附试验试剂盒（ELISA KIT）： | 第17页 |
| 1.2.4 血液生化分析试剂 | 第17页 |
| 1.2.5 提取RNA以及PCR的使用试剂 | 第17页 |
| 1.2.6 Western blot试剂和耗材 | 第17-18页 |
| 1.2.7 一抗和二抗 | 第18页 |
| 1.2.8 病理组织切片所用试剂 | 第18-20页 |
| 1.2.9 引物设计和合成 | 第20页 |
| 1.3 主要仪器及设备 | 第20-22页 |
| 1.4 主要试剂配制 | 第22-25页 |
| 1.4.1 蛋白裂解液和RNA电泳所需试剂 | 第22页 |
| 1.4.2 Western Blot试剂 | 第22-25页 |
| 1.5 实验方法 | 第25-38页 |
| 1.5.1 建立高脂诱导肾损伤小鼠模型及分组、给药 | 第25-26页 |
| 1.5.2 血液及组织标本的采集 | 第26页 |
| 1.5.3 血液检测 | 第26页 |
| 1.5.4 ELISA法测定肾脏内的细胞因子和血中KIM-1 以及TNF-α | 第26-28页 |
| 1.5.5 肾组织中的TG测定和总蛋白测定 | 第28-30页 |
| 1.5.6 逆转录和RT-PCR（Reverse transcription PCR ） | 第30-33页 |
| 1.5.7 苏木精—伊红法 ( HE ) 染色，PAS染色和Masson染色 | 第33-34页 |
| 1.5.8 检测肾组织内P50和P65以及磷酸化P65的蛋白表达 | 第34-37页 |
| 1.5.9 统计学处理 | 第37-38页 |
| 2 结果 | 第38-50页 |
| 2.1 外源性硫化氢降低肥胖小鼠体重 | 第38页 |
| 2.2 硫化氢降低肥胖小鼠血液中的脂质水平 | 第38-39页 |
| 2.3 外源性硫化氢降低肾组织中的甘油三酯 | 第39-40页 |
| 2.4 腹腔注射硫氢化钠对肥胖小鼠肾脏功能的改善 | 第40-41页 |
| 2.5 外源性硫化氢改善了肥胖小鼠肾脏结构损伤 | 第41-44页 |
| 2.6 外源性H_2S对肾脏中硫化氢合成酶的基因表达的调节 | 第44-45页 |
| 2.7 H_2S对肥胖小鼠血清中TNF-α 的调节 | 第45-46页 |
| 2.8 H_2S对肥胖小鼠肾脏细胞因子的调节 | 第46-47页 |
| 2.9 外源性H_2S对肾脏细胞因子m RNA表达的调节 | 第47-48页 |
| 2.10 外源性H_2S对肾组织中TNF-α 蛋白表达的调节 | 第48页 |
| 2.11 外源性H_2S对肾组织中NF-κ B亚基蛋白表达的调节 | 第48-50页 |
| 3.讨论 | 第50-54页 |
| 结论 | 第54-56页 |
| 参考文献 | 第56-60页 |
| 综述 肾脏损伤的研究进展以及硫化氢在肾损伤的作用 | 第60-72页 |
| 参考文献 | 第67-72页 |
| 致谢 | 第72-73页 |
| 攻读硕士学位期间发表的文章 | 第73-74页 |
