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NSE启动子驱动报告基因FTH1在骨髓间充质干细胞成神经分化中的表达及体外MR成像

英汉缩略语名词对照第6-8页
摘要第8-13页
ABSTRACT第13-19页
前言第20-22页
1 材料第22-27页
    1.1 主要仪器第22-23页
    1.2 主要试剂第23-25页
    1.3 主要试剂的配制第25-26页
    1.4 慢病毒载体系统、包装细胞及菌株第26-27页
2 实验方法第27-35页
    2.1 LV5载体酶切第27-28页
    2.2 PCR方法获取NSE启动子+FTH1序列片段第28-30页
    2.3 目的基因NSE启动子+FTH1克隆到载体LV5中第30-31页
    2.4 慢病毒包装第31页
    2.5 使用CsCl密度梯度离心法纯化病毒第31页
    2.6 使用逐孔稀释滴度测定法测定慢病毒滴度第31-32页
    2.7 MSCs提取及培养第32页
    2.8 MSCs干性鉴定第32页
    2.9 MSCs感染及筛选第32页
    2.10 MSCs体外成神经诱导分化及鉴定第32-33页
    2.11 Westernblot检测FTH1阳性表达的细胞第33页
    2.12 普鲁士蓝染色第33-34页
    2.13 透射电镜第34页
    2.14 体外细胞MR成像第34页
    2.15 CCK-8试剂检测细胞增殖活性第34页
    2.16 HE染色第34-35页
    2.17 统计学方法第35页
3 实验结果第35-44页
    3.1 重组质粒的双酶切鉴定第35-36页
    3.2 重组质粒测序验证第36-37页
    3.3 荧光显微镜观察细胞绿色荧光的表达第37-38页
    3.4 LV5-NSE-FTH1及阴性对照LV5-GFP慢病毒检测结果第38页
    3.5 MSCs细胞形态观察及流式鉴定第38-39页
    3.6 荧光显微镜观察细胞绿色荧光的表达第39页
    3.7 神经元样细胞形态学观察及免疫细胞学鉴定第39-40页
    3.8 Westernblot检测MSCs成神经分化前后FTH1的表达第40-41页
    3.9 普鲁士蓝染色第41-42页
    3.10 透射电镜第42页
    3.11 体外细胞MR成像第42-43页
    3.12 细胞增殖活性检测(CCK-8)第43页
    3.13 HE染色第43-44页
4 讨论第44-47页
全文总结第47-48页
参考文献第48-52页
文献综述第52-65页
    参考文献第58-65页
致谢第65-66页
攻读硕士期间发表论文第66页

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