| 摘要 | 第4-7页 |
| Abstract | 第7-9页 |
| 中英文对照 | 第12-13页 |
| 前言 | 第13-16页 |
| 1 羊膜上皮细胞以及间充质细胞具有减轻炎症和调节免疫的作用 | 第13页 |
| 2 巨噬细胞的极化表型及相应的功能特征 | 第13-14页 |
| 3 巨噬细胞极化现象与疾病的关系 | 第14页 |
| 4 H-AEC作用巨噬细胞的可能途径 | 第14-16页 |
| 第一章 H-AEC、HA-MSC、UC-MSC的分离、鉴定和培养 | 第16-22页 |
| 1 材料和方法 | 第16-20页 |
| 1.1 材料与试剂 | 第16-17页 |
| 1.2 试剂配制 | 第17页 |
| 1.3 主要仪器 | 第17-18页 |
| 1.4 分离、鉴定、培养的方法 | 第18-20页 |
| 2 结果 | 第20页 |
| 3 讨论 | 第20页 |
| 4 结论 | 第20-21页 |
| 附图 | 第21-22页 |
| 第二章 人羊膜上皮细胞干预脂多糖刺激的RAW264.7细胞向M1极化及其初步机制 | 第22-35页 |
| 1 材料和方法 | 第22-28页 |
| 1.1 材料与试剂 | 第22-23页 |
| 1.2 试剂配制 | 第23-24页 |
| 1.3 主要仪器 | 第24-25页 |
| 1.4 实验方法 | 第25-28页 |
| 2 结果 | 第28-29页 |
| 2.1 RAW264.7细胞的鉴定 | 第28页 |
| 2.2 RAW264.7细胞迁移率实验组和阳性对照组有统计学差异 | 第28页 |
| 2.3 羊膜上皮细胞能减少LPS刺激下RAW264.7 NO的分泌 | 第28页 |
| 2.4 H-AEC能使LPS刺激下的M1型RAW264.7转变为M2型 | 第28-29页 |
| 2.5 H-AEC可能通过抑制NFKB通路抑制RAW264.7 M1型相关基因的表达 | 第29页 |
| 2.6 H-AEC可能通过分泌TGF-β1抑制RAW264.7 M1型相关基因或促进M2型相关基因表达 | 第29页 |
| 3 结论 | 第29页 |
| 4 讨论 | 第29-31页 |
| 附图 | 第31-35页 |
| 第三章 三种成体干细胞对脂多糖诱导RAW264.7细胞炎症状态的不同作用比较 | 第35-42页 |
| 1 材料和方法 | 第35-37页 |
| 1.1 材料和试剂 | 第35-36页 |
| 1.2 主要仪器 | 第36页 |
| 1.3 实验方法 | 第36-37页 |
| 2 结果 | 第37-38页 |
| 2.1 H-AEC、HA-MSC、UC-MSC处理对RAW264.7迁移率的影响 | 第37页 |
| 2.2 HAEC共培养后能降低LPS刺激的RAW264.7分泌NO | 第37页 |
| 2.3 H-AEC、HA-MSC、UC-MSC处理对RAW264.7细胞M1、M2相关基因表达的不同作用 | 第37-38页 |
| 3 结论 | 第38页 |
| 4 讨论 | 第38-40页 |
| 附图 | 第40-42页 |
| 参考文献 | 第42-46页 |
| 综述 | 第46-52页 |
| 参考文献 | 第49-52页 |
| 攻读学位期间主要的研究成果 | 第52-53页 |
| 致谢 | 第53页 |
