| 摘要 | 第4-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 英文缩略语 | 第7-10页 |
| 1 前言 | 第10-12页 |
| 2 材料与方法 | 第12-30页 |
| 2.1 实验动物 | 第12页 |
| 2.2 材料与试剂 | 第12-13页 |
| 2.3 仪器设备及软件 | 第13-14页 |
| 2.4 主要试剂配制 | 第14-20页 |
| 2.5 实验方法 | 第20-30页 |
| 2.5.1 表现型测定 | 第20页 |
| 2.5.2 肾小球的分离 | 第20-22页 |
| 2.5.3 肾小球分离效果的观察 | 第22页 |
| 2.5.4 肾小球蛋白的纯化 | 第22-23页 |
| 2.5.5 肾小球蛋白浓度定量 | 第23页 |
| 2.5.6 CyDyes荧光染料标记蛋白样本 | 第23-24页 |
| 2.5.7 肾小球蛋白的双向凝胶电泳 | 第24-27页 |
| 2.5.8 CyDye荧光染料图像采集 | 第27页 |
| 2.5.9 SYPRO?RubyProteinGelStain染色 | 第27页 |
| 2.5.10 凝胶内差异点的分析及挖点 | 第27-28页 |
| 2.5.11 胶粒的胶内酶解 | 第28页 |
| 2.5.12 点靶 | 第28-29页 |
| 2.5.13 western blot验证 | 第29页 |
| 2.5.14 免疫组织化学验证 | 第29-30页 |
| 3 实验结果 | 第30-47页 |
| 3.1 小鼠表现型分析 | 第30-34页 |
| 3.1.1 体重变化对比 | 第30页 |
| 3.1.2 尿蛋白变化 | 第30-31页 |
| 3.1.3 肾脏病理改变 | 第31-34页 |
| 3.2 肾小球分离效果的观察 | 第34-35页 |
| 3.2.1 万能显微镜效果 | 第34页 |
| 3.2.2 HE染色效果 | 第34-35页 |
| 3.2.3 扫描电镜效果 | 第35页 |
| 3.3 分析胶的荧光图像扫描结果 | 第35-37页 |
| 3.4 肾小球差异蛋白的筛选 | 第37-43页 |
| 3.5 western blot检测结果 | 第43-45页 |
| 3.6 免疫组化结果 | 第45-47页 |
| 4 讨论 | 第47-49页 |
| 5 结论 | 第49-50页 |
| 本论文创新性的自我评价 | 第50-51页 |
| 参考文献 | 第51-55页 |
| 综述 | 第55-62页 |
| 参考文献 | 第58-62页 |
| 攻读学位期间取得的研究成果 | 第62-63页 |
| 致谢 | 第63-64页 |
| 个人简介 | 第64页 |