摘要 | 第4-5页 |
Abstract | 第5-6页 |
引言 | 第10-11页 |
1 文献综述 | 第11-26页 |
1.1 中药拳参的研究概述 | 第11-16页 |
1.1.1 拳参的地理分布 | 第11页 |
1.1.2 拳参的植物特征及药材性状 | 第11-12页 |
1.1.3 拳参的主要化学成分 | 第12-13页 |
1.1.4 拳参的药理活性 | 第13-16页 |
1.2 CFTR 概述 | 第16-25页 |
1.2.1 CFTR 的结构 | 第17页 |
1.2.2 CFTR 的调控 | 第17-18页 |
1.2.3 CFTR 的表达与功能 | 第18页 |
1.2.4 CFTR 的突变形式 | 第18-19页 |
1.2.5 CFTR 及其相关疾病 | 第19-23页 |
1.2.6 CFTR 抑制剂的研究 | 第23-25页 |
1.3 本研究的内容与意义 | 第25-26页 |
2 拳参抑制 CFTR 氯离子通道开放活性成分的分离 | 第26-40页 |
2.1 实验材料 | 第26-27页 |
2.1.1 仪器 | 第26页 |
2.1.2 试剂和药品 | 第26-27页 |
2.1.3 中药 | 第27页 |
2.1.4 细胞 | 第27页 |
2.2 实验方法 | 第27-29页 |
2.2.1 CFTR 氯离子通道抑制剂的细胞荧光淬灭检测模型与方法 | 第27-28页 |
2.2.2 中药拳参初提物的制备 | 第28页 |
2.2.3 D101 型大孔树脂柱层析 | 第28-29页 |
2.2.4 硅胶柱层析 | 第29页 |
2.2.5 色谱条件 | 第29页 |
2.3 实验结果与分析 | 第29-38页 |
2.3.1 拳参粗提物对野生型 CFTR 氯离子通道抑制活性的初步筛选 | 第29-30页 |
2.3.2 拳参活性组分 B07 对野生型 CFTR 氯离子通道开放的抑制作用 | 第30-31页 |
2.3.3 拳参粗提取物及活性区间的 HPLC 分析 | 第31-33页 |
2.3.4 拳参粗提物经 D101 大孔树脂柱层析分离后各组分的 HPLC 分析 | 第33-35页 |
2.3.5 硅胶柱层析分离拳参活性组分的 HPLC 分析 | 第35-37页 |
2.3.6 拳参各分离组分对野生型 CFTR 氯离子通道开放的抑制作用 | 第37-38页 |
2.4 讨论与总结 | 第38-40页 |
2.4.1 拳参对野生型 CFTR 氯离子通道的开放具有抑制作用 | 第38页 |
2.4.2 拳参中抑制 CFTR 氯离子通道开放活性的有效成分的分离 | 第38-40页 |
3 拳参乙醇提取物对 CFTR 氯离子通道抑制活性的研究 | 第40-51页 |
3.1 实验材料 | 第40-41页 |
3.1.1 仪器 | 第40页 |
3.1.2 试剂和药品 | 第40页 |
3.1.3 实验动物 | 第40页 |
3.1.4 细胞 | 第40-41页 |
3.2 实验方法 | 第41-42页 |
3.2.1 CFTR 氯离子通道抑制活性的细胞荧光淬灭检测方法 | 第41页 |
3.2.2 大鼠结肠粘膜 CFTR 氯离子通道短路电流测定方法 | 第41页 |
3.2.3 小鼠回肠液体分泌的体内测定方法 | 第41页 |
3.2.4 数据统计分析 | 第41-42页 |
3.3 实验结果与分析 | 第42-49页 |
3.3.1 拳参活性组分 G5 对野生型 CFTR 氯离子通道开放的抑制作用 | 第42-43页 |
3.3.2 拳参活性组分 G5 对ΔF508 突变型 CFTR 氯离子通道开放的抑制作用 | 第43-44页 |
3.3.3 拳参活性组分 G5 抑制 CFTR 氯离子通道开放的动力学和可逆性分析 | 第44-45页 |
3.3.4 拳参活性组分 G5 对大鼠结肠粘膜短路电流的测定 | 第45-47页 |
3.3.5 拳参活性组分 G5 对小鼠回肠液体分泌的影响 | 第47-48页 |
3.3.6 拳参对不同 CFTR 氯离子通道激活剂的抑制作用分析 | 第48-49页 |
3.4 讨论与总结 | 第49-51页 |
3.4.1 拳参对 CFTR 氯离子通道开放的抑制作用 | 第49-50页 |
3.4.2 拳参止泻作用机制的研究 | 第50-51页 |
结论 | 第51-52页 |
本论文创新点 | 第52-53页 |
参考文献 | 第53-60页 |
KrebsHensleit(KH)溶液配方 | 第60-61页 |
攻读硕士学位期间发表学术论文情况 | 第61-62页 |
致谢 | 第62页 |