| 摘要 | 第6-8页 |
| abstract | 第8-10页 |
| 第一章 文献综述 | 第15-31页 |
| 1.1 引言 | 第15页 |
| 1.2 决明化学成分的研究 | 第15-19页 |
| 1.3 决明提取物药理活性的研究进展 | 第19-23页 |
| 1.3.1 决明提取物对糖尿病的抑制功效 | 第19-20页 |
| 1.3.2 神经保护功效 | 第20-21页 |
| 1.3.3 抗氧化功效 | 第21页 |
| 1.3.4 抗虫抑菌活性 | 第21-22页 |
| 1.3.5 抗癌功效 | 第22页 |
| 1.3.6 降压调脂功效 | 第22页 |
| 1.3.7 保肝功效 | 第22-23页 |
| 1.4 转录组学的发展概况 | 第23-26页 |
| 1.4.1 药用植物转录组学研究进展 | 第23-26页 |
| 1.4.2 航天诱变材料的转录组学研究 | 第26页 |
| 1.5 蛋白质组学研究概述 | 第26-29页 |
| 1.5.1 蛋白质组学的基本技术与方法 | 第26-27页 |
| 1.5.2 药用植物蛋白质组学研究进展 | 第27-29页 |
| 1.6 本研究的目的及意义 | 第29-30页 |
| 1.7 技术路线 | 第30-31页 |
| 第二章 决明遗传及质量标志物含量的多样性研究 | 第31-47页 |
| 2.1 引言 | 第31页 |
| 2.2 材料与方法 | 第31-35页 |
| 2.2.1 实验材料 | 第31-33页 |
| 2.2.2 实验方法 | 第33-35页 |
| 2.3 结果与分析 | 第35-44页 |
| 2.3.1 ISSR和SCoT分子标记的多态性 | 第35-36页 |
| 2.3.2 聚类分析 | 第36-38页 |
| 2.3.3 主坐标分析 | 第38页 |
| 2.3.4 决明种群结构分析 | 第38-40页 |
| 2.3.5 决明子形态多样性分析 | 第40-42页 |
| 2.3.6 不同地区决明子质量标志物的含量测定 | 第42-44页 |
| 2.4 讨论 | 第44-47页 |
| 2.4.1 基于分子标记和决明子形态特征的遗传多样性分析 | 第44-45页 |
| 2.4.2 不同地理区域之间决明种群的遗传关系 | 第45-46页 |
| 2.4.3 航天诱变株系质量标志物的含量变化情况 | 第46-47页 |
| 第三章 航天诱变决明株系的转录组学研究 | 第47-69页 |
| 3.1 引言 | 第47页 |
| 3.2 材料与方法 | 第47-49页 |
| 3.2.1 实验材料 | 第47-48页 |
| 3.2.2 转录组测序 | 第48页 |
| 3.2.3 转录组拼接及生物信息学分析 | 第48页 |
| 3.2.4 实时荧光定量PCR分析 | 第48-49页 |
| 3.3 结果与分析 | 第49-66页 |
| 3.3.1 样本RNA的质量评价 | 第49页 |
| 3.3.2 转录组测序的基本结果 | 第49-50页 |
| 3.3.3 Unigene的功能注释 | 第50-51页 |
| 3.3.4 Unigene的GO功能注释 | 第51-52页 |
| 3.3.5 Unigene的KOG注释 | 第52-53页 |
| 3.3.6 Unigene的KEGG分类 | 第53-54页 |
| 3.3.7 航天诱变株系与对照株系的对比研究 | 第54-55页 |
| 3.3.8 差异表达基因的GO富集分析 | 第55-59页 |
| 3.3.9 差异表达基因的KEGG注释 | 第59-62页 |
| 3.3.10 差异表达基因的KEGG通路富集分析 | 第62-65页 |
| 3.3.11 转录组分析的qRT-PCR验证 | 第65-66页 |
| 3.4 讨论 | 第66-69页 |
| 3.4.1 转录组测序的结果分析 | 第66-67页 |
| 3.4.2 航天诱变株系与对照株系之间的差异分析 | 第67页 |
| 3.4.3 航天诱变株系的变异机制 | 第67-69页 |
| 第四章 航天诱变决明株系QC46的蛋白质组学研究 | 第69-90页 |
| 4.1 引言 | 第69页 |
| 4.2 材料与方法 | 第69-71页 |
| 4.2.1 实验材料 | 第69-70页 |
| 4.2.2 蛋白的质谱鉴定及分析 | 第70页 |
| 4.2.3 决明叶片叶绿素含量的测定 | 第70-71页 |
| 4.2.4 实时荧光定量PCR分析 | 第71页 |
| 4.2.5 转录组与蛋白质组学联合分析 | 第71页 |
| 4.3 结果与分析 | 第71-87页 |
| 4.3.1 质谱鉴定的基本结果 | 第71-73页 |
| 4.3.2 QC46与对照之间的差异表达蛋白 | 第73-75页 |
| 4.3.3 差异表达蛋白质的GO分析 | 第75-78页 |
| 4.3.4 差异表达蛋白的KEGG通路注释 | 第78-80页 |
| 4.3.5 差异表达蛋白的KEGG富集分析 | 第80-82页 |
| 4.3.6 差异表达蛋白的聚类分析 | 第82-83页 |
| 4.3.7 叶绿素含量的测定 | 第83-84页 |
| 4.3.8 蛋白质组分析的qRT-PCR验证 | 第84页 |
| 4.3.9 转录组和蛋白质组学联合分析 | 第84-86页 |
| 4.3.10 基于差异表达基因和差异表达蛋白的蒽醌类代谢途径研究 | 第86-87页 |
| 4.4 讨论 | 第87-90页 |
| 4.4.1 Labelfree蛋白质组学鉴定结果分析 | 第87-88页 |
| 4.4.2 QC46与对照株系之间差异表达蛋白的分析 | 第88-89页 |
| 4.4.3 航天诱变株系QC46的变异机制分析 | 第89-90页 |
| 第五章 决明萘甲酸盐合成酶基因的克隆及功能研究 | 第90-109页 |
| 5.1 引言 | 第90页 |
| 5.2 材料与方法 | 第90-98页 |
| 5.2.1 实验材料 | 第90-91页 |
| 5.2.2 决明萘甲酸盐合成酶基因的克隆及分析 | 第91-94页 |
| 5.2.3 决明毛状根遗传转化体系的构建 | 第94-95页 |
| 5.2.4 过表达和反义表达SoMenB基因的载体构建 | 第95-96页 |
| 5.2.5 重组质粒转化发根农杆菌ATCC15834 | 第96页 |
| 5.2.6 决明转基因毛状根的鉴定 | 第96-97页 |
| 5.2.7 转基因毛状根中次生代谢物含量的测定 | 第97页 |
| 5.2.8 转基因毛状根中基因表达量的检测 | 第97-98页 |
| 5.3 结果与分析 | 第98-107页 |
| 5.3.1 SoMenB基因的克隆及结构分析 | 第98-100页 |
| 5.3.2 SoMenB蛋白的系统进化分析 | 第100-101页 |
| 5.3.3 SoMenB蛋白的亚细胞定位 | 第101-102页 |
| 5.3.4 SoMenB基因的时空特异性表达模式 | 第102页 |
| 5.3.5 决明毛状根遗传转化体系的建立 | 第102-104页 |
| 5.3.6 决明转基因毛状根的鉴定 | 第104-105页 |
| 5.3.7 转基因毛状根的形态特征及次生代谢物含量分析 | 第105-106页 |
| 5.3.8 转基因毛状根中基因表达水平的变化 | 第106-107页 |
| 5.4 讨论 | 第107-109页 |
| 5.4.1 决明子中的蒽醌类物质的功效 | 第107页 |
| 5.4.2 SoMenB参与决明中蒽醌类物质的生物合成 | 第107-108页 |
| 5.4.3 决明转基因体系的探讨 | 第108-109页 |
| 第六章 结论与创新点 | 第109-111页 |
| 6.1 结论 | 第109-110页 |
| 6.2 创新点 | 第110页 |
| 6.3 展望 | 第110-111页 |
| 参考文献 | 第111-123页 |
| 附录 | 第123-126页 |
| 致谢 | 第126-127页 |
| 个人简介 | 第127页 |
