中文摘要 | 第8-10页 |
Abstract | 第10-11页 |
1 前言 | 第12-40页 |
1.1 AMF的简介 | 第12-14页 |
1.2 AM共生的植物信号通路 | 第14-24页 |
1.2.1 AM共生起始的预共生信号 | 第14-16页 |
1.2.2 共生信号通路 | 第16-20页 |
1.2.3 AM共生保守的基因简介 | 第20-24页 |
1.3 宿主植物向AMF的碳转运 | 第24-27页 |
1.3.1 AM定殖的根中蔗糖的卸载、运输和代谢 | 第24-25页 |
1.3.2 糖从宿主植物到AMF的转运 | 第25-26页 |
1.3.3 脂质从宿主植物到AMF的转运 | 第26-27页 |
1.4 AMF向宿主植物的矿质营养转运 | 第27-30页 |
1.4.1 磷从AMF到宿主植物的转运 | 第28-29页 |
1.4.2 氮(铵)从AMF到宿主植物的转运 | 第29-30页 |
1.4.3 金属离子从AMF到宿主植物的转运 | 第30页 |
1.5 AMF的PGP效应及其影响因素 | 第30-34页 |
1.5.1 菌根途径的磷吸收以及磷对AM共生的影响 | 第31-33页 |
1.5.2 AMF的其他促生机制 | 第33页 |
1.5.3 AMF促生效应的影响因素 | 第33-34页 |
1.6 AM共生与植物病害抗性 | 第34-38页 |
1.6.1 AMF在植物病原生物防治中的潜能 | 第34-36页 |
1.6.2 AMF提高宿主植物抗病性的机制 | 第36-37页 |
1.6.3 菌根诱导的抗性 | 第37-38页 |
1.7 棉花黄萎病的简介 | 第38-39页 |
1.8 本研究的目的和意义 | 第39-40页 |
2 材料与方法 | 第40-46页 |
2.1 实验材料 | 第40-41页 |
2.1.1 植物材料 | 第40页 |
2.1.2 供试菌种 | 第40页 |
2.1.3 引物 | 第40-41页 |
2.1.4 常用仪器 | 第41页 |
2.1.5 溶液及培养基的配制 | 第41页 |
2.2 实验方法 | 第41-46页 |
2.2.1 AMF孢子悬浮液的制备 | 第41-42页 |
2.2.2 盆栽试验 | 第42页 |
2.2.3 田间试验 | 第42-43页 |
2.2.4 棉花SEA的测定 | 第43页 |
2.2.5 无机磷含量的测定 | 第43-44页 |
2.2.6 棉花总RNA的提取 | 第44页 |
2.2.7 反转录和qRT-PCR分析 | 第44-45页 |
2.2.8 黄萎病菌菌丝生物量的测定 | 第45页 |
2.2.9 平板对峙试验 | 第45-46页 |
3 结果与分析 | 第46-59页 |
3.1 不同棉花品种的SEA | 第46-47页 |
3.2 SEA对AMF促生效应的影响 | 第47-48页 |
3.3 田间接种AMF对鲁棉一号的促生效应 | 第48-54页 |
3.3.1 AMF对鲁棉一号生长的影响 | 第48-51页 |
3.3.2 AMF对鲁棉一号磷吸收的影响 | 第51-53页 |
3.3.3 AMF对鲁棉一号产量和纤维品质的影响 | 第53-54页 |
3.4 AMF对鲁棉一号黄萎病抗性的影响 | 第54-56页 |
3.5 AMF对鲁棉一号抗病相关基因的影响 | 第56-57页 |
3.6 AM共生体的体外抑真菌活性 | 第57-59页 |
4 讨论 | 第59-64页 |
4.1 棉花的SEA与宿主基因型有关 | 第59页 |
4.2 AMF介导的PGP依赖于高SEA | 第59-60页 |
4.3 棉花中参与菌根途径磷吸收的PT基因 | 第60页 |
4.4 AMF诱导鲁棉一号对黄萎病的抗性 | 第60-62页 |
4.5 AM共生体的挥发性物质具有直接的抑真菌活性 | 第62页 |
4.6 AMF介导的抗病机制总结 | 第62-63页 |
4.7 AMF提高鲁棉一号的田间产量和纤维品质 | 第63页 |
4.8 AMF在农业生产应用中的展望 | 第63-64页 |
5 结论 | 第64-66页 |
参考文献 | 第66-92页 |
致谢 | 第92-93页 |
附录I:常用仪器 | 第93-94页 |
附录II:溶液及培养基的配制 | 第94-96页 |
攻读学位期间发表论文情况 | 第96页 |