| 中文摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 缩略语/符号说明 | 第11-13页 |
| 前言 | 第13-16页 |
| 研究现状、成果 | 第13-15页 |
| 研究目的、方法 | 第15-16页 |
| 一、小檗碱对Min小鼠肠道息肉生长的干预及其机制 | 第16-62页 |
| 1.1 对象和方法 | 第16-35页 |
| 1.1.1 实验材料 | 第16-18页 |
| 1.1.2 Min小鼠的饲养和鉴定 | 第18-21页 |
| 1.1.3 药物干预的分组及标本留取 | 第21-22页 |
| 1.1.4 息肉大小、数量、病理类型以及异型增生的评价 | 第22页 |
| 1.1.5 肠道息肉细胞增殖的检测 | 第22-23页 |
| 1.1.6 肠道息肉细胞凋亡的检测 | 第23-24页 |
| 1.1.7 基因芯片分析 | 第24-29页 |
| 1.1.8 免疫组化方法检测相关信号通路分子的表达 | 第29页 |
| 1.1.9 Western blot方法检测相关信号通路分子的蛋白水平 | 第29-32页 |
| 1.1.10 实时定量PCR分析 | 第32-34页 |
| 1.1.11 ELISA方法检测肠粘膜PGE_2水平 | 第34-35页 |
| 1.1.12 统计学方法 | 第35页 |
| 1.2 结果 | 第35-54页 |
| 1.2.1 Min小鼠鉴定结果 | 第35-36页 |
| 1.2.2 小檗碱对Min小鼠息肉生长干预的安全性评价 | 第36-37页 |
| 1.2.3 小檗碱对Min小鼠息肉生长干预的有效性评价 | 第37-39页 |
| 1.2.4 小檗碱对Min小鼠肠道息肉细胞增殖的影响 | 第39页 |
| 1.2.5 小檗碱对Min小鼠肠道息肉细胞凋亡的影响 | 第39-42页 |
| 1.2.6 小檗碱干预前后基因表达谱的差异 | 第42-47页 |
| 1.2.7 小檗碱对Wnt信号通路的干预作用 | 第47页 |
| 1.2.8 小檗碱对EGFR信号通路的干预作用 | 第47-50页 |
| 1.2.9 小檗碱对Wnt和EGFR信号通路关键分子mRNA水平的影响 | 第50-52页 |
| 1.2.10 小檗碱对COX-2蛋白表达及PGE_2水平的影响 | 第52-54页 |
| 1.3 讨论 | 第54-61页 |
| 1.3.1 FAP的临床防治极为困难 | 第54-55页 |
| 1.3.2 Min小鼠是FAP实验研究较为理想的动物模型 | 第55-56页 |
| 1.3.3 小檗碱在肠道疾病防治领域新应用的机制 | 第56-58页 |
| 1.3.4 小檗碱对Min小鼠息肉生长干预的安全性及有效性评价 | 第58页 |
| 1.3.5 小檗碱抑制Min小鼠肠道息肉生长可能的分子机制 | 第58-61页 |
| 1.4 小结 | 第61-62页 |
| 二、小檗碱对IMCE细胞系生长的影响及其机制 | 第62-76页 |
| 2.1 对象和方法 | 第62-67页 |
| 2.1.1 实验材料 | 第62-63页 |
| 2.1.2 IMCE细胞培养 | 第63-64页 |
| 2.1.3 细胞增殖的检测 | 第64页 |
| 2.1.4 细胞凋亡的分析 | 第64-65页 |
| 2.1.5 Western blot方法检测EGFR和Akt及其磷酸化水平 | 第65-67页 |
| 2.1.6 统计学方法 | 第67页 |
| 2.2 结果 | 第67-71页 |
| 2.2.1 小檗碱对IMCE细胞增殖的影响 | 第67-69页 |
| 2.2.2 小檗碱对IMCE细胞凋亡的影响 | 第69页 |
| 2.2.3 小檗碱对IMCE细胞EGFR磷酸化的影响 | 第69-70页 |
| 2.2.4 小檗碱对IMCE细胞Akt磷酸化的影响 | 第70-71页 |
| 2.3 讨论 | 第71-75页 |
| 2.3.1 IMCE细胞是FAP研究较为理想的细胞模型 | 第71-72页 |
| 2.3.2 小檗碱通过抑制EGFR活化抑制IMCE细胞的增殖 | 第72-73页 |
| 2.3.3 小檗碱通过PI3K-Akt信号途径促进IMCE细胞的凋亡 | 第73-75页 |
| 2.4 小结 | 第75-76页 |
| 全文结论 | 第76-77页 |
| 论文创新点 | 第77-78页 |
| 参考文献 | 第78-90页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第90-92页 |
| 综述 家族性腺瘤性息肉病实验研究模型的建立及应用 | 第92-118页 |
| 综述参考文献 | 第107-118页 |
| 致谢 | 第118页 |
