| 摘要 | 第5-7页 |
| abstract | 第7-8页 |
| 英文缩略词表 | 第9-12页 |
| 第1章 综述 | 第12-27页 |
| 1.1 肺纤维化的流行病学研究 | 第12页 |
| 1.2 肺纤维化的病因 | 第12-13页 |
| 1.3 肺间质纤维化的发病机制 | 第13-15页 |
| 1.3.1“靶细胞”成纤维细胞与肌成纤维细胞 | 第13-14页 |
| 1.3.2 肺泡上皮细胞损伤与转分化 | 第14页 |
| 1.3.3 肺微血管内皮细胞功能异常与转分化 | 第14-15页 |
| 1.3.4 基质成分合成与降解失衡 | 第15页 |
| 1.4 肺微血管内皮系统与纤维化 | 第15-18页 |
| 1.4.1 PMVECs超微结构 | 第15-16页 |
| 1.4.2 内皮细胞功能[18,19] | 第16页 |
| 1.4.3 内皮细胞功能紊乱表型与疾病 | 第16-18页 |
| 1.5 ENMT发生过程中的信号转导通路 | 第18-21页 |
| 1.5.1 TGF-β1/Smad3信号通路在肺纤维化中的作用 | 第18页 |
| 1.5.2 Wnt/β-Catenin信号通路 | 第18-20页 |
| 1.5.3 Notch信号通路简介 | 第20-21页 |
| 1.6 肺纤维化发生过程中细胞标志物 | 第21-23页 |
| 1.6.1 TGF-β 是致纤维化关键的细胞因子 | 第21页 |
| 1.6.2 Smads蛋白 | 第21页 |
| 1.6.3 E-cadherin的结构及特性 | 第21-22页 |
| 1.6.4 经典Wnt通路的关键因子 β-catenin | 第22页 |
| 1.6.5 α-平滑肌激动蛋白 | 第22-23页 |
| 参考文献 | 第23-27页 |
| 第2章 实验研究 | 第27-43页 |
| 2.1 实验材料 | 第29-30页 |
| 2.1.1 实验试剂 | 第29页 |
| 2.1.2 实验设备 | 第29-30页 |
| 2.2 实验方法 | 第30-36页 |
| 2.2.1 动物模型制备及分组 | 第30页 |
| 2.2.2 标本收集 | 第30页 |
| 2.2.3 大鼠肺组织病理学观察 | 第30-31页 |
| 2.2.4 Masson染色观察大鼠肺组织胶原纤维的变化 | 第31页 |
| 2.2.5 采用荧光PCR技术观察不同实验组肺组织Smad3、α-SMA、Snail、E-cadherin及 β-catenin的表达变化 | 第31-33页 |
| 2.2.6 原代培养肺纤维化模型大鼠肺微血管内皮细胞 | 第33-34页 |
| 2.2.7 采用RNA干扰技术阻断TGF-β/Smad信号通路 | 第34页 |
| 2.2.8 RT-PCR检测各组E-cadherin及 α-SMA、I型胶原蛋白的表达 | 第34-36页 |
| 2.2.9 统计学分析 | 第36页 |
| 2.3 结果 | 第36-40页 |
| 2.3.1 两组大鼠一般情况之比较 | 第36-37页 |
| 2.3.2 肉眼观察两组大鼠肺组织 | 第37页 |
| 2.3.3 光镜下观察两组大鼠肺组织病理形态学变化 | 第37-38页 |
| 2.3.4 Masson染色显示大鼠肺组织胶原纤维表达变化 | 第38-39页 |
| 2.3.5 肺组织Smad3、α-SMA、Snail、E-cadherin及 β-catenin的表达 | 第39页 |
| 2.3.6 RNA干扰后各组E-cadherin及 α-SMA、I型胶原蛋白的表达 | 第39-40页 |
| 2.4 讨论 | 第40-42页 |
| 2.5 结论 | 第42-43页 |
| 参考文献 | 第43-46页 |
| 致谢 | 第46页 |
