摘要 | 第4-6页 |
ABSTRACT | 第6-8页 |
前言 | 第13-18页 |
0.1 恶性肿瘤并发血栓 | 第13-14页 |
0.1.1 恶性肿瘤并发血栓形成的机制 | 第13-14页 |
0.1.2 肿瘤并发血栓形成的治疗 | 第14页 |
0.2 金黄色葡萄球菌肠毒素C2超抗原 | 第14-16页 |
0.2.1 金黄色葡萄球菌 | 第14-15页 |
0.2.2 金黄色葡萄球菌肠毒素C2 | 第15页 |
0.2.3 SEC2的抗肿瘤机制 | 第15-16页 |
0.2.4 SEC2缺失突变体 | 第16页 |
0.3 金黄色葡萄球菌激酶 | 第16-17页 |
0.3.1 Sak的溶栓作用机制 | 第16-17页 |
0.3.2 Sak缺失突变体 | 第17页 |
0.4 实验室前期研究 | 第17页 |
0.5 研究目的和意义 | 第17-18页 |
第1章 嵌合蛋白制备条件优化 | 第18-26页 |
1.1 实验目的 | 第18页 |
1.2 方案设计与分析 | 第18页 |
1.3 实验材料与试剂 | 第18-21页 |
1.3.1 实验菌种 | 第18-19页 |
1.3.2 实验试剂 | 第19-20页 |
1.3.3 仪器与设备 | 第20页 |
1.3.4 常用培养基配置 | 第20-21页 |
1.4 实验方法 | 第21-22页 |
1.4.1 菌株的活化 | 第21页 |
1.4.2 重组大肠杆菌培养条件优化 | 第21页 |
1.4.3 抗肿瘤溶栓嵌合蛋白诱导条件优化 | 第21-22页 |
1.5 结果与讨论 | 第22-25页 |
1.5.1 培养条件优化结果 | 第22-24页 |
1.5.2 诱导条件优化结果 | 第24-25页 |
1.6 分析与讨论 | 第25-26页 |
第2章 嵌合蛋白结合MHC Ⅱ类分子能力研究 | 第26-34页 |
2.1 实验目的 | 第26页 |
2.2 方案设计与分析 | 第26页 |
2.3 实验材料和试剂 | 第26-29页 |
2.3.1 实验菌株和细胞 | 第26页 |
2.3.2 实验试剂 | 第26-27页 |
2.3.3 实验仪器与设备 | 第27页 |
2.3.4 实验试剂配制 | 第27-29页 |
2.4 实验方法 | 第29-32页 |
2.4.1 抗肿瘤溶栓嵌合蛋白制备 | 第29-30页 |
2.4.2 蛋白样品测定 | 第30页 |
2.4.3 Western blot方法检测嵌合蛋白结合MHC Ⅱ类分子能力 | 第30-32页 |
2.5 结果 | 第32-33页 |
2.6 分析与讨论 | 第33-34页 |
第3章 嵌合蛋白体外活性研究 | 第34-43页 |
3.1 实验目的 | 第34页 |
3.2 方案设计与分析 | 第34页 |
3.3 实验材料和试剂 | 第34-36页 |
3.3.1 细胞系 | 第34-35页 |
3.3.2 实验试剂 | 第35页 |
3.3.3 仪器与设备 | 第35页 |
3.3.4 细胞培养溶液的配置 | 第35-36页 |
3.4 实验方法 | 第36-40页 |
3.4.1 细胞的复苏 | 第36-37页 |
3.4.2 823、HT-29细胞的传代和培养 | 第37页 |
3.4.3 k562细胞的传代和培养 | 第37页 |
3.4.4 细胞计数方法 | 第37-38页 |
3.4.5 鼠脾淋巴细胞增殖试验 | 第38-39页 |
3.4.6 体外抑瘤试验 | 第39-40页 |
3.5 结果 | 第40-41页 |
3.5.1 嵌合蛋白刺激鼠PBMC细胞增殖活性 | 第40页 |
3.5.2 融合蛋白体外对肿瘤的抑制作用 | 第40-41页 |
3.6 分析与讨论 | 第41-43页 |
第4章 嵌合蛋白体内活性研究 | 第43-49页 |
4.1 实验目的 | 第43页 |
4.2 方案设计与分析 | 第43页 |
4.3 实验材料与试剂 | 第43-44页 |
4.3.1 实验材料 | 第43页 |
4.3.2 实验试剂 | 第43-44页 |
4.3.3 仪器与设备 | 第44页 |
4.4 实验方法 | 第44-45页 |
4.4.1 S_(180)肉瘤小鼠移植瘤模型的构建 | 第44页 |
4.4.2 动物分组及给药 | 第44页 |
4.4.3 肿瘤、肝脏、脾脏组织的分离和小鼠眼眶取血 | 第44-45页 |
4.5 结果 | 第45-48页 |
4.6 分析与讨论 | 第48-49页 |
第5章 结论与展望 | 第49-51页 |
致谢 | 第51-52页 |
参考文献 | 第52-57页 |
攻读学位期间发表论文以及参加科研情况 | 第57页 |