| 英文缩略词表 | 第6-8页 |
| 中文摘要 | 第8-11页 |
| 英文摘要 | 第11-14页 |
| 前言 | 第15-18页 |
| 材料和方法 | 第18-62页 |
| 1. 材料 | 第18-22页 |
| 1.1 动物实验 | 第18-20页 |
| 1.1.1 主要试剂与药品 | 第18-19页 |
| 1.1.2 主要实验仪器 | 第19-20页 |
| 1.2 细胞实验 | 第20-22页 |
| 1.2.1 主要试剂与药品 | 第20-21页 |
| 1.2.2 主要实验仪器 | 第21-22页 |
| 2. 方法 | 第22-62页 |
| 2.1 动物实验方法 | 第22-35页 |
| 2.1.1 实验动物分组与实验流程图 | 第22-23页 |
| 2.1.2 实验动物标本取材 | 第23-24页 |
| 2.1.3 ELISA方法测定血清抗dsDNA抗体，C3,C4浓度 | 第24-25页 |
| 2.1.4 尿蛋白浓度测定 | 第25-26页 |
| 2.1.5 肾脏组织病理切片制作 | 第26-27页 |
| 2.1.6 肾脏组织HE染色 | 第27页 |
| 2.1.7 肾脏组织PAS染色 | 第27-28页 |
| 2.1.8 肾脏组织PASM染色 | 第28-29页 |
| 2.1.9 肾脏组织MASSON染色 | 第29-30页 |
| 2.1.10 肾脏组织IFN-α 免疫荧光 | 第30-31页 |
| 2.1.11 肾脏组织Real-Time PCR测诱导基因和趋化因子 | 第31-35页 |
| 2.2 细胞实验方法 | 第35-61页 |
| 2.2.1 细胞实验分组与实验流程图 | 第35-37页 |
| 2.2.2 细胞实验分组与实验方法 | 第37-38页 |
| 2.2.3 IFN-α 干预系膜细胞时间点筛选 | 第38-41页 |
| 2.2.4 RNA-Seq测序实验 | 第41-45页 |
| 2.2.5 RNA-Seq测序实验筛选细胞信号通路Real-TimePCR验证 | 第45-49页 |
| 2.2.6 系膜细胞Real-Time PCR测诱导基因和趋化因子 | 第49-51页 |
| 2.2.7 ELISA测IFN-a干预系膜细胞上清夜趋化因子 | 第51-55页 |
| 2.2.8 Transwell实验和流式细胞仪实验 | 第55-61页 |
| 2.3 统计学分析 | 第61-62页 |
| 结果 | 第62-92页 |
| 1. 动物实验 | 第62-75页 |
| 1.1 小鼠一般状况 | 第62页 |
| 1.2 尿蛋白浓度增加、血清抗dsDNA抗体升高，C3,C4下降 | 第62页 |
| 1.3 肾脏组织系膜细胞增生系膜区增宽 | 第62-66页 |
| 1.4 实验组小鼠肾脏系膜区IFN-α 免疫荧光明显表达 | 第66-68页 |
| 1.5 肾脏组织诱导基因和趋化因子的表达 | 第68-75页 |
| 2. 细胞实验 | 第75-92页 |
| 2.1 IFN-α 干预系膜细胞筛选最佳时间点为4小时 | 第75-76页 |
| 2.2 RNA -Seq测序显示TLR3信号通路相关基因表达 | 第76-78页 |
| 2.3 Real-Time PCR验证RNA-Seq测序TLR3信号通路相关基因表达 | 第78-84页 |
| 2.4 使用Real-Time PCR验证IFN-α 干预系膜细胞的I型干扰素诱导基因和趋化因子的表达 | 第84-88页 |
| 2.5 使用ELISA检测方法验证IFN-α 干预系膜细胞上清液的趋化因子表达 | 第88-89页 |
| 2.6 趋化因子对淋巴细胞趋化作用 | 第89-92页 |
| 讨论 | 第92-99页 |
| 结论 | 第99-100页 |
| 参考文献 | 第100-106页 |
| 综述 | 第106-117页 |
| 参考文献 | 第113-117页 |
| 致谢 | 第117-118页 |
| 附攻读博士学位期间发表论文和专利 | 第118页 |
