| 摘要 | 第6-8页 |
| Abstract | 第8-9页 |
| 第一章 绪论 | 第17-34页 |
| 1.1 心血管疾病与动脉粥样硬化 | 第17-18页 |
| 1.2 血管支架及其存在的问题 | 第18-19页 |
| 1.3 提高血管支架生物相容性的常用策略 | 第19-24页 |
| 1.3.1 无机涂层 | 第19页 |
| 1.3.2 肝素化涂层 | 第19-20页 |
| 1.3.3 药物洗脱支架 | 第20-23页 |
| 1.3.4 内皮化 | 第23-24页 |
| 1.4 常用于心血管疾病治疗的几种生物活性分子 | 第24-28页 |
| 1.4.1 肝素 | 第24-25页 |
| 1.4.2 比伐卢定(BVLD) | 第25-27页 |
| 1.4.3 没食子酸 | 第27页 |
| 1.4.4 CD34抗体 | 第27页 |
| 1.4.5 内皮细胞生长因子(VEGF) | 第27-28页 |
| 1.4.6 一氧化氮 | 第28页 |
| 1.5 等离子体聚合和生物医学应用 | 第28-30页 |
| 1.5.1 等离子体聚合 | 第28-29页 |
| 1.5.2 等离子体聚合在生物医学应用 | 第29-30页 |
| 1.6 贻贝仿生的聚多巴胺涂层及其生物医学应用 | 第30-31页 |
| 1.6.1 贻贝仿生蛋白和聚多巴胺涂层 | 第30页 |
| 1.6.2 聚多巴胺的生物学应用 | 第30-31页 |
| 1.7 本论文立体目的与内容 | 第31-34页 |
| 1.7.1 研究意义和目的 | 第31-32页 |
| 1.7.2 研究内容 | 第32-34页 |
| 第二章 表面质子功能化等离子体聚合涂层制备及其内皮细胞生物相容性研究 | 第34-47页 |
| 2.1 引言 | 第34页 |
| 2.2 实验材料与方法 | 第34-38页 |
| 2.2.1 质子功能化等离子体聚合涂层制备 | 第34-36页 |
| 2.2.2 等离子体聚合薄膜表征 | 第36页 |
| 2.2.3 人脐静脉内皮细胞(HUVECs)培养 | 第36-37页 |
| 2.2.4 HUVECs肌动蛋白染色 | 第37页 |
| 2.2.5 HUVECs增殖 | 第37页 |
| 2.2.6 HUVECs迁移 | 第37-38页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第38-46页 |
| 2.3.1 薄膜厚度分析 | 第38页 |
| 2.3.2 薄膜化学结构与组成 | 第38-41页 |
| 2.3.3 等离子体聚合薄膜亲水性和表面能分析 | 第41-42页 |
| 2.3.4 HUVECs的生长行为 | 第42-46页 |
| 2.4 结论 | 第46-47页 |
| 第三章 聚多巴胺作为血管支架涂层的研究 | 第47-67页 |
| 3.1 引言 | 第47页 |
| 3.2 实验材料与方法 | 第47-51页 |
| 3.2.1 PDAM涂层的制备 | 第47页 |
| 3.2.2 PDAM涂层的表征 | 第47页 |
| 3.2.3 球囊扩张和稳定性试验 | 第47-48页 |
| 3.2.4 体外血液相容性 | 第48-50页 |
| 3.2.5 HUVECs培养 | 第50页 |
| 3.2.6 人脐动脉平滑肌细胞(HUASMCs)培养 | 第50页 |
| 3.2.7 HUVECs肌动蛋白的免疫染色 | 第50页 |
| 3.2.8 HUVECs增殖 | 第50页 |
| 3.2.9 HUVECs和HUASMCs凋亡或坏死 | 第50-51页 |
| 3.2.10 HUVECs迁移评价 | 第51页 |
| 3.2.11 HUVECs的NO和PGI_2释放 | 第51页 |
| 3.2.12 HUASMCs染色 | 第51页 |
| 3.2.13 HUASMCs增殖 | 第51页 |
| 3.3 结果和讨论 | 第51-66页 |
| 3.3.1 PDAM化学成分分析 | 第51-53页 |
| 3.3.2 PDAM表面形貌和亲水性 | 第53页 |
| 3.3.3 PDAM作为支架涂层的力学性能和稳定性研究 | 第53-55页 |
| 3.3.4 血液相容性 | 第55-58页 |
| 3.3.5 HUVECs和HUASMCs生长行为评价 | 第58-66页 |
| 3.4 结论 | 第66-67页 |
| 第四章 没食子酸功能化的等离子体聚烯丙胺涂层对内皮和平滑肌细胞生长行为选择性调控的研究 | 第67-91页 |
| 4.1 引言 | 第67页 |
| 4.2 实验材料与方法 | 第67-73页 |
| 4.2.1 PPAam的制备 | 第67-68页 |
| 4.2.2 GA固定 | 第68页 |
| 4.2.3 QCM-D实时监测GA固定 | 第68-69页 |
| 4.2.4 薄膜表面表征 | 第69页 |
| 4.2.5 HUVECs培养 | 第69页 |
| 4.2.6 HUASMCs培养 | 第69页 |
| 4.2.7 HUVECs肌动蛋白染色 | 第69页 |
| 4.2.8 HUVECs增殖 | 第69页 |
| 4.2.9 HUVECs和HUASMCs的凋亡和坏死 | 第69页 |
| 4.2.10 HUVECs迁移 | 第69-70页 |
| 4.2.11 HUVECs的NO释放 | 第70页 |
| 4.2.12 HUASMCs染色 | 第70页 |
| 4.2.13 HUASMCs增殖 | 第70页 |
| 4.2.14 HUVECs与HUASMCs共培养 | 第70页 |
| 4.2.15 材料表面官能团检测 | 第70-71页 |
| 4.2.16 Anti-CD34抗体与VEGF共固定 | 第71页 |
| 4.2.17 QCM-D实时动态监测anti-CD34抗体和VEGF共固定 | 第71-72页 |
| 4.2.18 EPCs的分离和培养 | 第72页 |
| 4.2.19 EPCs动态捕获 | 第72-73页 |
| 4.3 结果和讨论 | 第73-89页 |
| 4.3.1 GA接枝及其表征 | 第73-76页 |
| 4.3.2 HUVECs和HUASMCs生长行为评价 | 第76-84页 |
| 4.3.3 含多种官能团涂层的构建 | 第84-85页 |
| 4.3.4 Anti-CD34抗体和VEGF共固定 | 第85-87页 |
| 4.3.5 EPCs捕获及HUVECs生长行为研究 | 第87-89页 |
| 4.4 结论 | 第89-91页 |
| 第五章 等离子体聚烯丙胺薄膜共价固定比伐卢定及其生物相容性研究 | 第91-107页 |
| 5.1 引言 | 第91-92页 |
| 5.2 实验材料和方法 | 第92-94页 |
| 5.2.1 PPAam涂层沉积 | 第92页 |
| 5.2.2 PPAam涂层表面接枝BVLD | 第92页 |
| 5.2.3 化学结构、成分分析 | 第92页 |
| 5.2.4 QCM实时监测BVLD的固定和凝血酶吸附 | 第92页 |
| 5.2.5 表面吸附凝血酶的活性评价 | 第92页 |
| 5.2.6 体外血液相容性 | 第92-93页 |
| 5.2.7 HUVECs培养 | 第93页 |
| 5.2.8 HUVECs肌动蛋白免疫染色 | 第93页 |
| 5.2.9 HUVECs增殖 | 第93页 |
| 5.2.10 HUVECs凋亡和坏死 | 第93页 |
| 5.2.11 HUVECs迁移 | 第93页 |
| 5.2.12 HUVECs的NO释放和PGI_2分泌 | 第93页 |
| 5.2.13 动物实验 | 第93-94页 |
| 5.3 结果和讨论 | 第94-106页 |
| 5.3.1 PPAam涂层表面BVLD的固定及其分析 | 第94-96页 |
| 5.3.2 凝血酶吸附和活性定量检测 | 第96-97页 |
| 5.3.3 血液相容性 | 第97-99页 |
| 5.3.4 BVLD功能化表面对内皮细胞生长行为的影响 | 第99-104页 |
| 5.3.5 体内实验结果 | 第104-106页 |
| 5.4 结论 | 第106-107页 |
| 第六章 等离子体聚烯丙胺薄膜表面肝素化以及血液相容性和细胞生长行为研究 | 第107-127页 |
| 6.1 引言 | 第107页 |
| 6.2 实验材料与方法 | 第107-110页 |
| 6.2.1 PPAam薄膜的制备 | 第107页 |
| 6.2.2 PPAam薄膜表面固定肝素 | 第107-108页 |
| 6.2.3 XPS分析 | 第108页 |
| 6.2.4 QCM-D检测肝素和VEGF固定量 | 第108-109页 |
| 6.2.5 PPAam表面固定肝素的生物功能性检测 | 第109页 |
| 6.2.6 体外的血液相容性评价 | 第109页 |
| 6.2.7 HUVECs培养 | 第109页 |
| 6.2.8 HUASMCs培养 | 第109-110页 |
| 6.2.9 肌动蛋白的免疫染色 | 第110页 |
| 6.2.10 HUVECs增殖 | 第110页 |
| 6.2.11 HUVECs和HUASMCs凋亡或坏死 | 第110页 |
| 6.2.12 HUVECs迁移评价 | 第110页 |
| 6.2.13 样品表面粘附HUVECs的NO释放和PGI_2分泌检测 | 第110页 |
| 6.2.14 HUASMCs鉴定和标记 | 第110页 |
| 6.2.15 HUASMCs增殖 | 第110页 |
| 6.2.16 动物实验 | 第110页 |
| 6.3 结果与讨论 | 第110-126页 |
| 6.3.1 肝素的接枝和稳定性 | 第110-113页 |
| 6.3.2 肝素功能化表面ATⅢ特异性结合能力和APTT分析 | 第113-114页 |
| 6.3.3 血液相容性 | 第114-116页 |
| 6.3.4 HUVECs和HUASMCs的生长行为评价 | 第116-124页 |
| 6.3.5 体内结果 | 第124-126页 |
| 6.4 结论 | 第126-127页 |
| 第七章 等离子体聚烯丙胺薄膜共价固定3,3,-二硒代二丙酸催化释放一氧化氮的仿生功能研究 | 第127-143页 |
| 7.1 引言 | 第127-128页 |
| 7.2 实验材料与方法 | 第128-130页 |
| 7.2.1 PPAam制备 | 第128页 |
| 7.2.2 SeDPA共价固定 | 第128页 |
| 7.2.3 材料表面化学结构和成分分析 | 第128页 |
| 7.2.4 NO催化速率检测 | 第128-129页 |
| 7.2.5 血小板粘附与cGMP检测 | 第129-130页 |
| 7.2.6 HUASMCs粘附、增殖和cGMP表达 | 第130页 |
| 7.2.7 HUVECs粘附与增殖 | 第130页 |
| 7.2.8 HUVECs和HUASMCs迁移 | 第130页 |
| 7.2.9 HUVECs和HUASMCs共培养 | 第130页 |
| 7.3 结果与讨论 | 第130-141页 |
| 7.4 结论 | 第141-143页 |
| 第八章 基于儿茶酚灵感化学的一氧化氮催化释放涂层的制备及其生物相容性研究 | 第143-187页 |
| 8.1 引言 | 第143-145页 |
| 8.2 实验材料和方法 | 第145-147页 |
| 8.2.1 NO催化涂层的制备 | 第145页 |
| 8.2.2 厚度检测 | 第145页 |
| 8.2.3 化学成分分析 | 第145-146页 |
| 8.2.4 基质辅助激光解析电离飞行时间质谱(MALDI-TOF MS)分析 | 第146页 |
| 8.2.5 羧基和胺基官能团检测 | 第146页 |
| 8.2.6 表面亲水性和形貌分析 | 第146页 |
| 8.2.7 NO催化释放 | 第146页 |
| 8.2.8 血小板粘附和cGMP分析 | 第146页 |
| 8.2.9 HUASMCs粘附和cGMP分析 | 第146页 |
| 8.2.10 HUVECs粘附和增殖 | 第146页 |
| 8.2.11 HUVECs迁移 | 第146页 |
| 8.2.12 HUVECs和HUASMCs共培养 | 第146-147页 |
| 8.2.13 体内支架植入 | 第147页 |
| 8.3 结果和讨论 | 第147-186页 |
| 8.3.1 GA介导GA/CySA聚合粘附涂层制备 | 第147-155页 |
| 8.3.2 CySA与不同儿茶酚聚合制备NO催化涂层 | 第155-167页 |
| 8.3.3 基于SeCA和儿茶酚的NO催化涂层制备 | 第167-186页 |
| 8.4 结论 | 第186-187页 |
| 第九章 全文总结和论文工作展望 | 第187-192页 |
| 9.1 论文总结 | 第187-190页 |
| 9.2 论文工作展望 | 第190-192页 |
| 9.2.1 BVLD-PPAam生物相容性评价 | 第190页 |
| 9.2.2 GA-PPAam涂层 | 第190-191页 |
| 9.2.3 NO催化粘附性涂层 | 第191-192页 |
| 致谢 | 第192-194页 |
| 参考文献 | 第194-221页 |
| 简写附录 | 第221-223页 |
| 攻读博士学位期间发表的论文 | 第223-227页 |
