| 中文摘要 | 第3-5页 |
| 英文摘要 | 第5-7页 |
| 中英文对照表 | 第8-14页 |
| 1 绪论 | 第14-30页 |
| 1.1 引言 | 第14页 |
| 1.2 天然多糖的免疫调节活性 | 第14-16页 |
| 1.2.1 对免疫器官的调节作用 | 第14页 |
| 1.2.2 对免疫细胞的作用 | 第14-15页 |
| 1.2.3 对效应分子的调节作用 | 第15页 |
| 1.2.4 产生抗肿瘤免疫效应 | 第15-16页 |
| 1.3 何首乌多糖的研究进展 | 第16-17页 |
| 1.3.1 何首乌多糖的生物活性研究 | 第16页 |
| 1.3.2 何首乌多糖的开发和利用 | 第16-17页 |
| 1.4 多糖-小分子药物轭合物的构建及应用 | 第17-26页 |
| 1.4.1 常用多糖载体 | 第18-20页 |
| 1.4.2 多糖与小分子药物轭合物的构建 | 第20-21页 |
| 1.4.3 多糖-蛋白质/肽类药物轭合物的构建 | 第21-23页 |
| 1.4.4 以天然多糖为载体的轭合物在药物传递体系中的应用 | 第23-25页 |
| 1.4.5 多糖载体与负载药物的协同效应 | 第25-26页 |
| 1.5 课题选题依据、目的和意义及研究内容 | 第26-30页 |
| 1.5.1 选题依据、目的及意义 | 第26-27页 |
| 1.5.2 研究内容 | 第27-28页 |
| 1.5.3 技术路线 | 第28-30页 |
| 2 何首乌多糖的提取与分离纯化 | 第30-42页 |
| 2.1 引言 | 第30页 |
| 2.2 试剂、材料和仪器设备 | 第30-31页 |
| 2.2.1 主要试剂 | 第30-31页 |
| 2.2.2 仪器与设备 | 第31页 |
| 2.3 实验方法 | 第31-34页 |
| 2.3.1 何首乌药材及其水提残渣中多糖提取 | 第31页 |
| 2.3.2 何首乌多糖提取物除蛋白 | 第31-32页 |
| 2.3.3 何首乌多糖提取物脱色 | 第32页 |
| 2.3.4 何首乌多糖提取物层析分离 | 第32页 |
| 2.3.5 何首乌多糖纯化 | 第32-33页 |
| 2.3.6 纯度检测及分子量测定 | 第33页 |
| 2.3.7 总糖含量测定 | 第33页 |
| 2.3.8 糖醛酸含量测定 | 第33页 |
| 2.3.9 蛋白质含量测定 | 第33-34页 |
| 2.3.10 何首乌多糖理化性质分析 | 第34页 |
| 2.4 结果与讨论 | 第34-41页 |
| 2.4.1 何首乌多糖的提取分离与制备 | 第34-38页 |
| 2.4.2 何首乌多糖快速脱色方法 | 第38-39页 |
| 2.4.3 何首乌均一多糖理化性质分析 | 第39-41页 |
| 2.5 本章小结 | 第41-42页 |
| 3 何首乌多糖的结构分析 | 第42-68页 |
| 3.1 引言 | 第42页 |
| 3.2 试剂、材料和仪器设备 | 第42-43页 |
| 3.2.1 主要试剂 | 第42-43页 |
| 3.2.2 仪器与设备 | 第43页 |
| 3.3 实验方法 | 第43-44页 |
| 3.3.1 红外光谱测试 | 第43页 |
| 3.3.2 单糖组成分析 | 第43页 |
| 3.3.3 甲基化-GC-MS分析 | 第43-44页 |
| 3.3.4 NMR测试 | 第44页 |
| 3.4 结果与讨论 | 第44-66页 |
| 3.4.1 何首乌均一多糖的单糖组成分析 | 第44-47页 |
| 3.4.2 红外光谱分析 | 第47-49页 |
| 3.4.3 甲基化分析 | 第49-56页 |
| 3.4.4 核磁共振谱分析 | 第56-65页 |
| 3.4.5 WPMP-1 和WPMP-2 的结构推测 | 第65-66页 |
| 3.5 本章小结 | 第66-68页 |
| 4 何首乌多糖的体外免疫调节活性研究 | 第68-84页 |
| 4.1 引言 | 第68页 |
| 4.2 试剂、材料和仪器设备 | 第68-69页 |
| 4.2.1 主要试剂 | 第68-69页 |
| 4.2.2 仪器与设备 | 第69页 |
| 4.3 实验方法 | 第69-71页 |
| 4.3.1 溶液配制 | 第69页 |
| 4.3.2 原代免疫细胞的分离 | 第69-70页 |
| 4.3.3 脾细胞增殖测定 | 第70页 |
| 4.3.4 腹腔巨噬细胞吞噬功能测定 | 第70-71页 |
| 4.3.5 细胞因子测定 | 第71页 |
| 4.4 结果及讨论 | 第71-82页 |
| 4.4.1 何首乌多糖对小鼠脾细胞/腹腔巨噬细胞的增殖活化效应 | 第71-77页 |
| 4.4.2 何首乌多糖对 5-FU所致小鼠脾细胞/腹腔巨噬细胞免疫抑制的调节作用 | 第77-81页 |
| 4.4.3 何首乌多糖免疫调节活性与结构的关系分析 | 第81-82页 |
| 4.5 本章小结 | 第82-84页 |
| 5 WPMP-2@5-FU轭合物的研究 | 第84-104页 |
| 5.1 引言 | 第84-85页 |
| 5.2 试剂、材料和仪器设备 | 第85-86页 |
| 5.2.1 主要试剂 | 第85页 |
| 5.2.2 仪器与设备 | 第85-86页 |
| 5.3 实验方法 | 第86-89页 |
| 5.3.1 5-FUAc的合成与表征 | 第86页 |
| 5.3.2 WPMP-2@5-FU轭合物的合成与表征 | 第86-87页 |
| 5.3.3 体外不同pH环境中轭合物的药物释放 | 第87页 |
| 5.3.4 WPMP-2@5-FU轭合物的细胞毒测试 | 第87-88页 |
| 5.3.5 WPMP-2@5-FU轭合物的免疫调节活性测试 | 第88-89页 |
| 5.4 结果与讨论 | 第89-101页 |
| 5.4.1 5-FUAc的制备、表征及HPLC测定 | 第89-92页 |
| 5.4.2 WPMP-2@5-FU轭合物的设计与构建 | 第92-94页 |
| 5.4.3 WPMP-2@5-FU轭合物载药量测定 | 第94页 |
| 5.4.4 WPMP-2@5-FU轭合物的体外释药特性 | 第94-95页 |
| 5.4.5 WPMP-2@5-FU轭合物的抗肿瘤活性 | 第95-98页 |
| 5.4.6 WPMP-2@5-FU轭合物的免疫保护作用 | 第98-101页 |
| 5.5 本章小结 | 第101-104页 |
| 6 总结和展望 | 第104-108页 |
| 6.1 总结 | 第104-106页 |
| 6.2 特色和创新点 | 第106页 |
| 6.3 展望 | 第106-108页 |
| 致谢 | 第108-110页 |
| 参考文献 | 第110-128页 |
| 附录 | 第128-129页 |
| A．作者在攻读学位期间科研成果目录 | 第128-129页 |
| B．作者在攻读学位期间参与的科研项目目录 | 第129页 |
