| 摘要 | 第8-10页 |
| 英文摘要 | 第10-12页 |
| 1. 前言 | 第13-21页 |
| 1.1 立题背景 | 第13页 |
| 1.2 炎症性肠病研究现状 | 第13-15页 |
| 1.2.1 炎症性肠病的发病机制 | 第13-14页 |
| 1.2.2 肠道菌群紊乱对炎症性肠病的影响 | 第14-15页 |
| 1.3 肉桂精油治疗炎症性肠病的研究进展 | 第15-16页 |
| 1.3.1 肉桂精油的提取工艺 | 第15页 |
| 1.3.2 肉桂精油的抑菌性能 | 第15-16页 |
| 1.3.3 肉桂精油调节肠道菌群失衡 | 第16页 |
| 1.4 高通量测序技术研究进展 | 第16-19页 |
| 1.4.1 分子生物技术的发展 | 第16-18页 |
| 1.4.2 高通量测序技术在肠道菌群中的研究进展 | 第18-19页 |
| 1.5 研究目的与意义 | 第19-20页 |
| 1.6 本研究拟采取的技术路线 | 第20-21页 |
| 2. 材料与方法 | 第21-28页 |
| 2.1 试验材料 | 第21页 |
| 2.1.1 供试药物 | 第21页 |
| 2.1.2 试验动物 | 第21页 |
| 2.2 主要材料与设备 | 第21-22页 |
| 2.2.1 试剂及来源 | 第21-22页 |
| 2.2.2 仪器及来源 | 第22页 |
| 2.3 动物模型的构建 | 第22页 |
| 2.4 一般状态的观察 | 第22页 |
| 2.5 DAI评分 | 第22-23页 |
| 2.6 HE染色 | 第23-24页 |
| 2.7 免疫器官指数 | 第24页 |
| 2.8 血红蛋白检测 | 第24页 |
| 2.9 结肠组织髓过氧化(MPO)活性的变化 | 第24-25页 |
| 2.10 高通量测序法测定肠道菌群变化 | 第25-28页 |
| 2.10.1 小鼠粪便总DNA的提取 | 第25页 |
| 2.10.2 肠道菌群16SrDNA V3区PCR扩增 | 第25-26页 |
| 2.10.3 Illumina MiSeq300高通量测序 | 第26-28页 |
| 3. 结果与讨论 | 第28-48页 |
| 3.1 肉桂精油对小鼠结肠炎的治疗作用 | 第28-35页 |
| 3.1.1 肉桂精油对肠炎小鼠体重的影响 | 第28-29页 |
| 3.1.2 肉桂精油对DSS模型小鼠结肠长度影响 | 第29页 |
| 3.1.3 肉桂精油对肠炎小鼠结肠组织损伤的影响 | 第29-31页 |
| 3.1.4 肉桂精油对肠炎小鼠DAI评分的影响 | 第31-32页 |
| 3.1.5 肉桂精油对肠炎小鼠结肠组织MPO值得影响 | 第32-33页 |
| 3.1.6 肉桂精油对肠炎小鼠免疫器官指数的影响 | 第33-34页 |
| 3.1.7 肉桂精油对肠炎小鼠血红蛋白含量变化的影响 | 第34-35页 |
| 3.2 基于高通量研究肉桂精油对肠炎小鼠肠道菌群的影响 | 第35-48页 |
| 3.2.1 OTU分类结果 | 第35-36页 |
| 3.2.2 肉桂精油对小鼠肠道菌群多样性和丰富度的影响 | 第36-39页 |
| 3.2.3 Alpha多样性指数 | 第39-40页 |
| 3.2.4 肉桂精油对小鼠肠道菌群相似度的影响 | 第40-41页 |
| 3.2.5 肉桂精油对小鼠肠道菌群结构组成的影响 | 第41-45页 |
| 3.2.6 肉桂精油对炎症性肠病特定菌群类型的作用 | 第45-48页 |
| 4. 讨论 | 第48-52页 |
| 4.1 肉桂精油对小鼠炎症性肠病的缓解作用 | 第48-49页 |
| 4.2 肉桂精油对肠炎小鼠肠道菌群的影响 | 第49-52页 |
| 4.2.1 肉桂精油对肠炎小鼠肠道菌群丰富度的影响 | 第49-50页 |
| 4.2.2 肉桂精油对肠炎小鼠肠道菌群结构组成的影响 | 第50-52页 |
| 5. 结论 | 第52-53页 |
| 致谢 | 第53-54页 |
| 参考文献 | 第54-61页 |
| 攻读硕士学位期间发表的学术论文 | 第61页 |
