| 中文摘要 | 第3-4页 |
| Abstract | 第4-5页 |
| 第一章 前言 | 第8-17页 |
| 1.1 植物NHX家族的研究进展 | 第8-11页 |
| 1.1.1 NHX家族概况 | 第9-10页 |
| 1.1.2 NHX的生物学功能 | 第10-11页 |
| 1.2 生长素及生长素运输蛋白 | 第11-16页 |
| 1.2.1 生长素的合成与降解 | 第11-12页 |
| 1.2.2 生长素的极性运输及运输蛋白 | 第12-16页 |
| 1.3 研究目的及意义 | 第16-17页 |
| 第二章 材料和方法 | 第17-28页 |
| 2.1 实验材料与试剂 | 第17-19页 |
| 2.1.1 实验材料 | 第17页 |
| 2.1.2 实验仪器 | 第17页 |
| 2.1.3 实验常用培养基与试剂 | 第17-19页 |
| 2.2 实验方法 | 第19-28页 |
| 2.2.1 植物生长条件 | 第19页 |
| 2.2.2 拟南芥叶片DNA的粗提取 | 第19-20页 |
| 2.2.3 PCR扩增及琼脂糖凝胶电泳 | 第20-21页 |
| 2.2.4 拟南芥杂交实验 | 第21-22页 |
| 2.2.5 PIN6/nhx5、PIN6/nhx6、PIN6/nhx5 nhx6纯合体的鉴定 | 第22页 |
| 2.2.6 拟南芥总RNA的提取 | 第22-23页 |
| 2.2.7 拟南芥RNA逆转录 | 第23页 |
| 2.2.8 1/2 MS固体培养基上的生长表型 | 第23-24页 |
| 2.2.9 土壤中的生长表型 | 第24-26页 |
| 2.2.10 拟南芥成熟叶片的叶绿素含量的测定 | 第26页 |
| 2.2.11 体视显微镜下剥花剥果荚实验 | 第26-27页 |
| 2.2.12 不同背景下PIN6植株荧光观察 | 第27-28页 |
| 第三章 实验结果 | 第28-40页 |
| 3.1 PIN6过表达植株纯合体的鉴定 | 第28-29页 |
| 3.2 PIN6过表达植株的逆转录PCR | 第29页 |
| 3.3 PIN6-GFP在叶脉中的荧光分布 | 第29-30页 |
| 3.4 PIN6过表达植株在 1/2 MS固体培养基上的生长表型 | 第30-31页 |
| 3.5 PIN6过表达植株在土壤中的生长表型 | 第31-35页 |
| 3.6 PIN6过表达植株的种子发育情况 | 第35-36页 |
| 3.7 PIN6过表达植株的花的形态观察 | 第36-39页 |
| 3.8 PIN6过表达植株的雄蕊发育分析 | 第39-40页 |
| 第四章 讨论 | 第40-43页 |
| 4.1 AtNHX5和AtNHX6不影响PIN6基因表达但调节PIN6在叶脉中的分布 | 第40-41页 |
| 4.2 AtPIN6调 节拟南芥生长发育的功能依赖于AtNHX5和AtNHX6 | 第41-42页 |
| 4.3 本论文取得的主要实验结果 | 第42-43页 |
| 参考文献 | 第43-47页 |
| 在学期间的研究成果 | 第47-48页 |
| 致谢 | 第48页 |
