| 中文摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-9页 |
| 第一章 绪论 | 第10-24页 |
| 1.1 纳米材料 | 第10-11页 |
| 1.2 荧光纳米材料 | 第11-13页 |
| 1.2.1 半导体量子点 | 第11-12页 |
| 1.2.2 碳点 | 第12页 |
| 1.2.3 有机小分子聚合物 | 第12页 |
| 1.2.4 金属纳米颗粒 | 第12-13页 |
| 1.3 铜纳米颗粒的制备方法 | 第13-15页 |
| 1.3.1 化学法 | 第13-14页 |
| 1.3.2 物理法 | 第14页 |
| 1.3.3 生物法 | 第14-15页 |
| 1.4 铜纳米颗粒在环境分析中的应用 | 第15-17页 |
| 1.4.1 金属离子的检测 | 第15-16页 |
| 1.4.2 阴离子的检测 | 第16页 |
| 1.4.3 小分子的检测 | 第16页 |
| 1.4.4 蛋白质的检测 | 第16-17页 |
| 1.4.5 核酸的检测 | 第17页 |
| 1.5 本研究工作的主要内容 | 第17-18页 |
| 参考文献 | 第18-24页 |
| 第二章 以D-青霉胺为模板，抗坏血酸为还原剂合成CuNPs检测Hg~(2+) | 第24-40页 |
| 2.1 引言 | 第24-25页 |
| 2.2 实验部分 | 第25-26页 |
| 2.2.1 试剂 | 第25页 |
| 2.2.2 仪器 | 第25页 |
| 2.2.3 合成DPA稳定的CuNPs | 第25-26页 |
| 2.2.4 检测Hg~(2+) | 第26页 |
| 2.3 实验结果和讨论 | 第26-34页 |
| 2.3.1 DPA-CuNPs的表征 | 第26页 |
| 2.3.2 Hg~(2+)诱导DPA-CuNPs分散 | 第26-29页 |
| 2.3.3 优化实验条件 | 第29-31页 |
| 2.3.4 灵敏度研究 | 第31-33页 |
| 2.3.5 检测Hg~(2+)的选择性 | 第33页 |
| 2.3.6 可能的猝灭机理 | 第33页 |
| 2.3.7 在实际样品中检测Hg~(2+) | 第33-34页 |
| 2.4 结论 | 第34页 |
| 参考文献 | 第34-40页 |
| 第三章 以L-组氨酸为模板的CuNPs为荧光探针检测Fe~(3+) | 第40-56页 |
| 3.1 引言 | 第40-41页 |
| 3.2 实验部分 | 第41-42页 |
| 3.2.1 试剂 | 第41页 |
| 3.2.2 仪器 | 第41页 |
| 3.2.3 合成L-组氨酸稳定的CuNPs | 第41-42页 |
| 3.2.4 检测Fe~(3+) | 第42页 |
| 3.3 实验结果和讨论 | 第42-50页 |
| 3.3.1 制得的L-His-CuNPs的表征 | 第42-43页 |
| 3.3.2 Fe~(3+)诱导L-His-CuNPs的团聚 | 第43-45页 |
| 3.3.3 优化实验条件 | 第45-47页 |
| 3.3.4 灵敏度研究 | 第47页 |
| 3.3.5 检测Fe~(3+)的选择性 | 第47-48页 |
| 3.3.6 可能的猝灭机理 | 第48-49页 |
| 3.3.7 在实际水样中检测Fe~(3+) | 第49-50页 |
| 3.4 结论 | 第50页 |
| 参考文献 | 第50-56页 |
| 第四章 通过刻蚀法合成pH依赖的荧光CuNPs检测苦味酸 | 第56-78页 |
| 4.1 引言 | 第56-57页 |
| 4.2 实验部分 | 第57-58页 |
| 4.2.1 试剂 | 第57页 |
| 4.2.2 仪器 | 第57-58页 |
| 4.2.3 CuNPs的制备 | 第58页 |
| 4.2.4 检测PA | 第58页 |
| 4.3 实验结果和讨论 | 第58-71页 |
| 4.3.1 制得的CuNPs的表征 | 第58-59页 |
| 4.3.2 CuNPs的稳定性 | 第59-60页 |
| 4.3.3 优化合成条件 | 第60-61页 |
| 4.3.4 CuNPs的pH响应特性 | 第61-65页 |
| 4.3.5 建立一个检测PA的荧光方法 | 第65-66页 |
| 4.3.6 检测PA的选择性 | 第66-68页 |
| 4.3.7 可能的PA响应机理 | 第68-69页 |
| 4.3.8 在实际水样中检测PA | 第69-71页 |
| 4.4 结论 | 第71页 |
| 参考文献 | 第71-78页 |
| 致谢 | 第78-80页 |
| 作者部分相关论文题录 | 第80页 |
