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壳聚糖基可注射温敏水凝胶的合成以及性能研究

学位论文数据集第3-4页
摘要第4-6页
ABSTRACT第6-8页
第一章 绪论第14-28页
    1.1 环境应答性高分子材料第14-19页
        1.1.1 温度敏感性水凝胶第15-17页
        1.1.2 pH敏感性水凝胶第17-18页
        1.1.3 电信号敏感水凝胶第18页
        1.1.4 双重敏感水凝胶第18-19页
            1.1.4.1 温度、pH敏感水凝胶第18页
            1.1.4.2 热、光敏感水凝胶第18-19页
            1.1.4.3 磁性、热敏水凝胶第19页
        1.1.5 其他敏感性水凝胶第19页
    1.2 可注射性水凝胶第19-24页
        1.2.1 可注射水凝胶的特殊要求第19页
        1.2.2 可注射水凝胶的分类第19-23页
            1.2.2.1 天然以及半天然的可注射高分子水凝胶第20-21页
            1.2.2.2 人工合成的可注射高分子水凝胶第21-23页
        1.2.3 可注射水凝胶的应用第23-24页
            1.2.3.1 药物控释载体第23页
            1.2.3.2 再生医学第23-24页
    1.3 壳聚糖基温敏水凝胶第24-28页
        1.3.1 壳聚糖及其生物活性第24-25页
        1.3.2 壳聚糖基温敏水凝胶研究现状第25-28页
第二章 PEG化壳聚糖的合成和表征第28-40页
    2.1 引言第28-30页
    2.2 材料和仪器第30页
        2.2.1 材料第30页
        2.2.2 仪器第30页
    2.3 实验方法第30-33页
        2.3.1 mPEG-CHO的合成第30页
        2.3.2 壳聚糖-聚乙二醇接枝物的合成第30-31页
        2.3.3 产物的表征第31-33页
            2.3.3.1 醛化度的测定第31-32页
            2.3.3.2 PEG化壳聚糖的接枝率的测定第32-33页
            2.3.3.3 产物的红外表征第33页
    2.4. 结果与讨论第33-40页
        2.4.1 mPEG-CHO的合成结果第33-35页
            2.4.1.1 不同反应条件下的比较第33-34页
            2.4.1.2 醛化度的测定第34-35页
        2.4.2 PEG化壳聚糖的合成结果第35-36页
            2.4.2.1 不同条件下PEG化壳聚糖的合成第35页
            2.4.2.2 PEG化壳聚糖的接枝率第35-36页
            2.4.2.3 接枝率测定方法探讨第36页
        2.4.3 PEG化壳聚糖FT-IR分析第36-40页
第三章 PEG化壳聚糖性能研究第40-50页
    3.1 引言第40页
    3.2 材料和仪器第40-41页
        3.2.1 材料第40页
        3.2.2 仪器第40-41页
    3.3 实验方法第41-42页
        3.3.1 合成不同接枝率的PEG化壳聚糖第41页
        3.3.2 PEG化壳聚糖在水中的溶胀度和溶解度的测定第41页
        3.3.3 PEG化壳聚糖在不同pH条件下溶胀度的测定第41页
        3.3.4 PEG化壳聚糖在不同溶液中的溶解性能测试第41页
        3.3.5 PEG化壳聚糖浊度的测定第41-42页
        3.3.6 PEG化壳聚糖温敏水凝胶的筛选第42页
        3.3.7 PEG化壳聚糖温敏水凝胶的粘度测试第42页
        3.3.8 PEG化壳聚糖温敏水凝胶的温敏性能测试第42页
    3.4 结果与讨论第42-50页
        3.4.1 PEG化壳聚糖的溶胀度和溶解度第42-43页
        3.4.2 PEG化壳聚糖在不同pH值下的溶胀度第43-44页
        3.4.3 PEG化壳聚糖在不同溶液中的溶解性能测试第44页
        3.4.4 PEG化壳聚糖的浊度第44-46页
        3.4.5 温敏试样的筛选第46页
        3.4.6 温敏水凝胶的相变行为第46-48页
        3.4.7 水凝胶浓度对相变温度的影响第48-49页
        3.4.8 浓度和温度对水凝胶体系胶凝时间的影响第49-50页
第四章 PEG化壳聚糖温敏水凝胶对药物的控制释放第50-62页
    4.1 引言第50页
    4.2 材料和仪器第50页
        4.2.1 材料第50页
        4.2.2 仪器第50页
    4.3 实验方法第50-55页
        4.3.1 释放介质和模型药物的准备第50-52页
            4.3.1.1 药物释放介质第50-51页
            4.3.1.2 布洛芬模型药物第51页
            4.3.1.3 布洛芬-β-环糊精包合物的制备第51页
            4.3.1.4 布洛芬脂质体的制备第51-52页
        4.3.2 分析方法的建立第52-54页
            4.3.2.1 药物检测波长的选择第52页
            4.3.2.2 色谱条件的选择第52-53页
            4.3.2.3 标准曲线的建立第53-54页
        4.3.3 体外药物释放实验第54-55页
            4.3.3.1 模型药物在温敏水凝胶中的释放第54页
            4.3.3.2 药物累积释放率第54-55页
    4.4 结果与讨论第55-62页
        4.4.1 布洛芬-β-环糊精包合物的制备第55-56页
            4.4.1.1 包合物的制备第55页
            4.4.1.2 包合物的红外表征第55-56页
        4.4.2 布洛芬脂质体的制备第56-57页
            4.4.2.1 正交实验结果第56-57页
            4.4.2.2 布洛芬脂质体的显微形态结构第57页
        4.4.3 药物释放研究第57-62页
            4.4.3.1 mPEG-g-CS凝胶体系对药物缓释机理第57-58页
            4.4.3.2 凝胶浓度对药物释放速率的影响第58-59页
            4.4.3.3 药物浓度对释放的影响第59-60页
            4.4.3.4 布洛芬包食物在凝胶中的释放第60页
            4.4.3.5 布洛芬脂质体在凝胶中的释放第60-62页
第五章 PEG化壳聚糖血液相容性与动物皮下注射实验第62-68页
    5.0 引言第62页
    5.1 材料与方法第62-63页
        5.1.1 材料与仪器第62-63页
            5.1.1.1 药品第62页
            5.1.1.2 动物第62页
            5.1.1.3 仪器第62-63页
    5.2 实验方法第63-64页
        5.2.1 温敏水凝胶的制备第63页
        5.2.2 溶血与凝集实验第63-64页
            5.2.2.1 2%的兔红细胞混悬液的制备第63页
            5.2.2.2 温敏水凝胶检测样品的制备第63页
            5.2.2.3 样品检测第63-64页
        5.2.3 动物注射实验第64页
            5.2.3.1 温敏凝胶在大鼠体内的存留时间考察第64页
            5.2.3.2 温敏凝胶在大鼠体内的状态第64页
    5.3 结果与讨论第64-68页
        5.3.1 溶血与凝集实验结果第64-65页
            5.3.1.1 肉眼观察结果第64页
            5.3.1.2 分光光度计检测结果第64-65页
        5.3.2 动物注射实验结果第65-68页
            5.3.2.1 温敏凝胶在大鼠体内的存留时间第65页
            5.3.2.2 温敏凝胶在大鼠体内的状态第65-68页
第六章 结论与建议第68-70页
    6.1 结论第68-69页
    6.2 建议第69-70页
参考文献第70-74页
致谢第74-75页
研究成果及发表的学术论文第75-77页
北京化工大学硕士研究生学位论文答辩委员会决议书第77-78页

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