学位论文数据集 | 第3-4页 |
摘要 | 第4-6页 |
ABSTRACT | 第6-8页 |
第一章 绪论 | 第14-28页 |
1.1 环境应答性高分子材料 | 第14-19页 |
1.1.1 温度敏感性水凝胶 | 第15-17页 |
1.1.2 pH敏感性水凝胶 | 第17-18页 |
1.1.3 电信号敏感水凝胶 | 第18页 |
1.1.4 双重敏感水凝胶 | 第18-19页 |
1.1.4.1 温度、pH敏感水凝胶 | 第18页 |
1.1.4.2 热、光敏感水凝胶 | 第18-19页 |
1.1.4.3 磁性、热敏水凝胶 | 第19页 |
1.1.5 其他敏感性水凝胶 | 第19页 |
1.2 可注射性水凝胶 | 第19-24页 |
1.2.1 可注射水凝胶的特殊要求 | 第19页 |
1.2.2 可注射水凝胶的分类 | 第19-23页 |
1.2.2.1 天然以及半天然的可注射高分子水凝胶 | 第20-21页 |
1.2.2.2 人工合成的可注射高分子水凝胶 | 第21-23页 |
1.2.3 可注射水凝胶的应用 | 第23-24页 |
1.2.3.1 药物控释载体 | 第23页 |
1.2.3.2 再生医学 | 第23-24页 |
1.3 壳聚糖基温敏水凝胶 | 第24-28页 |
1.3.1 壳聚糖及其生物活性 | 第24-25页 |
1.3.2 壳聚糖基温敏水凝胶研究现状 | 第25-28页 |
第二章 PEG化壳聚糖的合成和表征 | 第28-40页 |
2.1 引言 | 第28-30页 |
2.2 材料和仪器 | 第30页 |
2.2.1 材料 | 第30页 |
2.2.2 仪器 | 第30页 |
2.3 实验方法 | 第30-33页 |
2.3.1 mPEG-CHO的合成 | 第30页 |
2.3.2 壳聚糖-聚乙二醇接枝物的合成 | 第30-31页 |
2.3.3 产物的表征 | 第31-33页 |
2.3.3.1 醛化度的测定 | 第31-32页 |
2.3.3.2 PEG化壳聚糖的接枝率的测定 | 第32-33页 |
2.3.3.3 产物的红外表征 | 第33页 |
2.4. 结果与讨论 | 第33-40页 |
2.4.1 mPEG-CHO的合成结果 | 第33-35页 |
2.4.1.1 不同反应条件下的比较 | 第33-34页 |
2.4.1.2 醛化度的测定 | 第34-35页 |
2.4.2 PEG化壳聚糖的合成结果 | 第35-36页 |
2.4.2.1 不同条件下PEG化壳聚糖的合成 | 第35页 |
2.4.2.2 PEG化壳聚糖的接枝率 | 第35-36页 |
2.4.2.3 接枝率测定方法探讨 | 第36页 |
2.4.3 PEG化壳聚糖FT-IR分析 | 第36-40页 |
第三章 PEG化壳聚糖性能研究 | 第40-50页 |
3.1 引言 | 第40页 |
3.2 材料和仪器 | 第40-41页 |
3.2.1 材料 | 第40页 |
3.2.2 仪器 | 第40-41页 |
3.3 实验方法 | 第41-42页 |
3.3.1 合成不同接枝率的PEG化壳聚糖 | 第41页 |
3.3.2 PEG化壳聚糖在水中的溶胀度和溶解度的测定 | 第41页 |
3.3.3 PEG化壳聚糖在不同pH条件下溶胀度的测定 | 第41页 |
3.3.4 PEG化壳聚糖在不同溶液中的溶解性能测试 | 第41页 |
3.3.5 PEG化壳聚糖浊度的测定 | 第41-42页 |
3.3.6 PEG化壳聚糖温敏水凝胶的筛选 | 第42页 |
3.3.7 PEG化壳聚糖温敏水凝胶的粘度测试 | 第42页 |
3.3.8 PEG化壳聚糖温敏水凝胶的温敏性能测试 | 第42页 |
3.4 结果与讨论 | 第42-50页 |
3.4.1 PEG化壳聚糖的溶胀度和溶解度 | 第42-43页 |
3.4.2 PEG化壳聚糖在不同pH值下的溶胀度 | 第43-44页 |
3.4.3 PEG化壳聚糖在不同溶液中的溶解性能测试 | 第44页 |
3.4.4 PEG化壳聚糖的浊度 | 第44-46页 |
3.4.5 温敏试样的筛选 | 第46页 |
3.4.6 温敏水凝胶的相变行为 | 第46-48页 |
3.4.7 水凝胶浓度对相变温度的影响 | 第48-49页 |
3.4.8 浓度和温度对水凝胶体系胶凝时间的影响 | 第49-50页 |
第四章 PEG化壳聚糖温敏水凝胶对药物的控制释放 | 第50-62页 |
4.1 引言 | 第50页 |
4.2 材料和仪器 | 第50页 |
4.2.1 材料 | 第50页 |
4.2.2 仪器 | 第50页 |
4.3 实验方法 | 第50-55页 |
4.3.1 释放介质和模型药物的准备 | 第50-52页 |
4.3.1.1 药物释放介质 | 第50-51页 |
4.3.1.2 布洛芬模型药物 | 第51页 |
4.3.1.3 布洛芬-β-环糊精包合物的制备 | 第51页 |
4.3.1.4 布洛芬脂质体的制备 | 第51-52页 |
4.3.2 分析方法的建立 | 第52-54页 |
4.3.2.1 药物检测波长的选择 | 第52页 |
4.3.2.2 色谱条件的选择 | 第52-53页 |
4.3.2.3 标准曲线的建立 | 第53-54页 |
4.3.3 体外药物释放实验 | 第54-55页 |
4.3.3.1 模型药物在温敏水凝胶中的释放 | 第54页 |
4.3.3.2 药物累积释放率 | 第54-55页 |
4.4 结果与讨论 | 第55-62页 |
4.4.1 布洛芬-β-环糊精包合物的制备 | 第55-56页 |
4.4.1.1 包合物的制备 | 第55页 |
4.4.1.2 包合物的红外表征 | 第55-56页 |
4.4.2 布洛芬脂质体的制备 | 第56-57页 |
4.4.2.1 正交实验结果 | 第56-57页 |
4.4.2.2 布洛芬脂质体的显微形态结构 | 第57页 |
4.4.3 药物释放研究 | 第57-62页 |
4.4.3.1 mPEG-g-CS凝胶体系对药物缓释机理 | 第57-58页 |
4.4.3.2 凝胶浓度对药物释放速率的影响 | 第58-59页 |
4.4.3.3 药物浓度对释放的影响 | 第59-60页 |
4.4.3.4 布洛芬包食物在凝胶中的释放 | 第60页 |
4.4.3.5 布洛芬脂质体在凝胶中的释放 | 第60-62页 |
第五章 PEG化壳聚糖血液相容性与动物皮下注射实验 | 第62-68页 |
5.0 引言 | 第62页 |
5.1 材料与方法 | 第62-63页 |
5.1.1 材料与仪器 | 第62-63页 |
5.1.1.1 药品 | 第62页 |
5.1.1.2 动物 | 第62页 |
5.1.1.3 仪器 | 第62-63页 |
5.2 实验方法 | 第63-64页 |
5.2.1 温敏水凝胶的制备 | 第63页 |
5.2.2 溶血与凝集实验 | 第63-64页 |
5.2.2.1 2%的兔红细胞混悬液的制备 | 第63页 |
5.2.2.2 温敏水凝胶检测样品的制备 | 第63页 |
5.2.2.3 样品检测 | 第63-64页 |
5.2.3 动物注射实验 | 第64页 |
5.2.3.1 温敏凝胶在大鼠体内的存留时间考察 | 第64页 |
5.2.3.2 温敏凝胶在大鼠体内的状态 | 第64页 |
5.3 结果与讨论 | 第64-68页 |
5.3.1 溶血与凝集实验结果 | 第64-65页 |
5.3.1.1 肉眼观察结果 | 第64页 |
5.3.1.2 分光光度计检测结果 | 第64-65页 |
5.3.2 动物注射实验结果 | 第65-68页 |
5.3.2.1 温敏凝胶在大鼠体内的存留时间 | 第65页 |
5.3.2.2 温敏凝胶在大鼠体内的状态 | 第65-68页 |
第六章 结论与建议 | 第68-70页 |
6.1 结论 | 第68-69页 |
6.2 建议 | 第69-70页 |
参考文献 | 第70-74页 |
致谢 | 第74-75页 |
研究成果及发表的学术论文 | 第75-77页 |
北京化工大学硕士研究生学位论文答辩委员会决议书 | 第77-78页 |