| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 第一章 轮状病毒VP6蛋白的研究进展 | 第10-19页 |
| 1 牛RV VP6基因的分子特征 | 第10-15页 |
| 2 VP6基因在PCR检测中的应用 | 第15页 |
| 3 VP6蛋白在ELISA检测中的应用 | 第15-16页 |
| 4 基于重组VP6蛋白的RV疫苗 | 第16-17页 |
| 5 小结与展望 | 第17页 |
| 6 本研究的目的意义 | 第17-19页 |
| 第二章 西藏牦牛源轮状病毒的分离鉴定 | 第19-28页 |
| 1 材料 | 第19-20页 |
| 1.1 细胞及样本 | 第19页 |
| 1.2 主要材料与试剂 | 第19-20页 |
| 1.3 主要的仪器 | 第20页 |
| 2 方法 | 第20-22页 |
| 2.1 牦牛源轮状病毒的分离培养 | 第20-21页 |
| 2.2 牦牛源轮状病毒的RT-PCR鉴定 | 第21-22页 |
| 2.3 牦牛源轮状病毒的间接免疫荧光鉴定 | 第22页 |
| 3 结果 | 第22-26页 |
| 3.1 牦牛源轮状病毒的分离培养 | 第22-23页 |
| 3.2 分离毒株RT-PCR的鉴定结果 | 第23-25页 |
| 3.3 分离毒株的IFA鉴定结果 | 第25-26页 |
| 4 讨论 | 第26-28页 |
| 4.1 牦牛源RV的分离培养 | 第26页 |
| 4.2 胰蛋白酶浓度对牦牛源RV分离培养的影响 | 第26-27页 |
| 4.3 分离培养牦牛源RV的意义 | 第27-28页 |
| 第三章 牦牛源轮状病毒VP6蛋白的克隆表达及应用 | 第28-44页 |
| 1 材料 | 第28-29页 |
| 1.1 血清、质粒、菌株与实验动物 | 第28页 |
| 1.2 材料与试剂 | 第28-29页 |
| 1.3 仪器 | 第29页 |
| 2 方法 | 第29-33页 |
| 2.1 牦牛源RV VP6的克隆表达 | 第29-31页 |
| 2.2 高免血清的制备 | 第31-32页 |
| 2.3 检测牦牛源RV IFA方法的建立 | 第32-33页 |
| 3 结果 | 第33-41页 |
| 3.1 牦牛源RV VP6基因的扩增结果及其序列分析 | 第33-35页 |
| 3.2 pET28α-VP6重组质粒的鉴定 | 第35-37页 |
| 3.3 牦牛源RV VP6基因的诱导表达 | 第37页 |
| 3.4 纯化后牦牛源RV VP6重组蛋白的鉴定 | 第37-38页 |
| 3.5 RV VP6重组蛋白的Western blot检测 | 第38-39页 |
| 3.6 RV高免血清的制备 | 第39页 |
| 3.7 牦牛源RV IFA检测方法的建立 | 第39-41页 |
| 4 讨论 | 第41-44页 |
| 4.1 RV VP6重组蛋白 | 第41-42页 |
| 4.2 IFA方法检测RV | 第42页 |
| 4.3 RV VP6蛋白在疫苗中的应用潜力 | 第42-44页 |
| 结论和创新点 | 第44-45页 |
| 参考文献 | 第45-52页 |
| 致谢 | 第52-53页 |