| 中文摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 中英文縮略词表 | 第10-11页 |
| 引言 | 第11-14页 |
| 1 实验材料 | 第14-18页 |
| 1.1 细胞和实验动物 | 第14页 |
| 1.2 主要试剂 | 第14页 |
| 1.3 常用试剂 | 第14-15页 |
| 1.4 主要仪器设备 | 第15-16页 |
| 1.5 其它实验用品 | 第16页 |
| 1.6 实验中手术器材 | 第16-17页 |
| 1.7 实验中试剂配制 | 第17-18页 |
| 2 实验方法 | 第18-31页 |
| 2.1 miRNA生物信息学预测 | 第18页 |
| 2.2 双荧光素酶报告基因系统检测miR-30b与SCN9A基因的靶标关系 | 第18-19页 |
| 2.3 在正常SD大鼠不同组织中检测SCN9A和miR-30b的表达量 | 第19-22页 |
| 2.4 SNI大鼠模型的建立与鉴定 | 第22-24页 |
| 2.5 大鼠SNI模型DRG中Nav1.7的表达 | 第24-28页 |
| 2.6 PC12细胞培养,瞬时转染miR-30b的类似物(agomir)和抑制物(antagomir)检测对Nav1.7表达的影响 | 第28-30页 |
| 2.7 大鼠SNI模型后鞘内植管注射miR-30b agomir,检测Nav1.7的表达以及大鼠疼痛行为学是否改变 | 第30页 |
| 2.8 数据统计与分析 | 第30-31页 |
| 3 实验结果 | 第31-46页 |
| 3.1 生物信息学预测SCN9A相关microRNA | 第31页 |
| 3.2 双荧光素酶报告基因系统检测miR-30b与SCN9A基因的靶标关系 | 第31-33页 |
| 3.3 体外瞬时转染miR-30b的类似物(agomir)和抑制物(antagomir)对Nav1.7表达的影响 | 第33-35页 |
| 3.4 正常SD大鼠不同组织中SCN9A的表达情况 | 第35-37页 |
| 3.5 SNI大鼠DRG中SCN9A和miR-30b的表达 | 第37-40页 |
| 3.6 SNI大鼠鞘内注射miR-30b agomir对大鼠痛行为以及Nav1.7表达的影响 | 第40-44页 |
| 3.7 正常大鼠鞘内注射miR-30b antagomir对大鼠痛行为的影响 | 第44-46页 |
| 讨论 | 第46-50页 |
| 结论 | 第50-51页 |
| 参考文献 | 第51-55页 |
| 综述 | 第55-67页 |
| 参考文献 | 第62-67页 |
| 个人简历 | 第67-68页 |
| 致谢 | 第68页 |
