| 中文摘要 | 第3-6页 |
| Abstract | 第6-8页 |
| 缩写词表 | 第9-14页 |
| 第一章 前言 | 第14-25页 |
| 1.1 山黧豆概述 | 第14-19页 |
| 1.1.1 山黧豆的生物学基本属性与地理分布 | 第14-15页 |
| 1.1.2 山黧豆的种质资源和利用价值 | 第15页 |
| 1.1.3 山黧豆神经毒素β-ODAP的生物合成与干旱适应性 | 第15-19页 |
| 1.2 根冠通讯学说研究进展 | 第19-20页 |
| 1.2.1 根冠通讯学说的建立以及研究进展 | 第19-20页 |
| 1.2.2 根源化学信号的基本定义 | 第20页 |
| 1.3 主要根源信号物质-脱落酸 | 第20-23页 |
| 1.3.1 脱落酸的化学结构和属性 | 第21页 |
| 1.3.2 脱落酸的生物合成 | 第21-22页 |
| 1.3.3 脱落酸与植物干旱适应性的关系 | 第22-23页 |
| 1.4 论文设计思路 | 第23-25页 |
| 第二章 山黧豆根源信号特征及生理生态效应 | 第25-41页 |
| 2.1 材料和方法 | 第25-29页 |
| 2.1.1 实验地点与材料 | 第25页 |
| 2.1.2 材料培养与处理 | 第25页 |
| 2.1.3 材料处理与生长条件 | 第25-26页 |
| 2.1.4 叶片气孔导度和叶片相对含水量测定 | 第26页 |
| 2.1.5 ABA的测定(Elisa试剂盒) | 第26-27页 |
| 2.1.6 脯氨酸的测定 | 第27页 |
| 2.1.7 活性氧和膜脂过氧化的测定 | 第27页 |
| 2.1.8 抗氧化酶活性测定 | 第27-28页 |
| 2.1.9 毒素β-ODAP含量的测定 | 第28页 |
| 2.1.10 数据分析方法 | 第28-29页 |
| 2.2 实验结果 | 第29-39页 |
| 2.2.1 干旱胁迫条件下山黧豆根源信号特征 | 第29-30页 |
| 2.2.2 添加和阻断条件下山黧豆叶片ABA含量变化 | 第30-31页 |
| 2.2.3 根源信号物质ABA对山黧豆根源信号特征的影响 | 第31-34页 |
| 2.2.4 根源信号调控下脯氨酸含量变化 | 第34页 |
| 2.2.5 根源信号调控下活性氧和膜脂过氧化水平的变化 | 第34-36页 |
| 2.2.6 根源信号调控下抗氧化酶活性变化 | 第36-38页 |
| 2.2.7 根源信号调控下叶片β-ODAP含量变化 | 第38-39页 |
| 2.3 讨论 | 第39-41页 |
| 2.3.1 脱落酸作为主要根源信号物质的生理效应及潜在的调控机理 | 第39-40页 |
| 2.3.2 根源信号调控与毒素β-ODAP合成的关系 | 第40-41页 |
| 第三章 根源信号调控下山黧豆产量形成及毒素富集 | 第41-55页 |
| 3.1 材料的培养 | 第41-42页 |
| 3.1.1 实验地点与材料 | 第41页 |
| 3.1.2 材料的处理 | 第41-42页 |
| 3.1.3 数据统计分析方法 | 第42页 |
| 3.2 结果与分析 | 第42-53页 |
| 3.2.1 不同时期根源信号对山黧豆形态学的影响 | 第42-44页 |
| 3.2.2 不同时期根源信号对山黧豆生物量分配的调控 | 第44-48页 |
| 3.2.3 不同时期根源信号对山黧豆产量和产量构成的调控 | 第48-50页 |
| 3.2.4 根源信号调控下毒素β-ODAP在黧豆种子中的富集 | 第50-53页 |
| 3.3 讨论 | 第53-55页 |
| 3.3.1 根源信号对山黧豆生长及产量形成的调控 | 第53-54页 |
| 3.3.2 根源信号特征与种子中β-ODAP合成之间的关系 | 第54-55页 |
| 第四章 根源信号调控下山黧豆生长相关关系 | 第55-65页 |
| 4.1 材料与方法 | 第55-56页 |
| 4.1.1 实验地点及材料 | 第55页 |
| 4.1.2 水分控制与材料处理 | 第55-56页 |
| 4.1.3 相对生长速率测定 | 第56页 |
| 4.1.4 数据分析方法 | 第56页 |
| 4.2 结果与分析 | 第56-63页 |
| 4.2.1 根源信号作用下山黧豆生长、干物质积累和产量形成 | 第56-59页 |
| 4.2.2 根源信号作用下山黧豆植株相对生长速率 | 第59-60页 |
| 4.2.3 根源信号对地上生物量相对生长速率的调控 | 第60-61页 |
| 4.2.4 根源信号调控下山黧豆生物量分配相关关系 | 第61-63页 |
| 4.3 讨论 | 第63-65页 |
| 第五章 根源信号调控下山黧豆碳同化过程、繁殖策略及毒素合成 | 第65-78页 |
| 5.1 材料与方法 | 第65-67页 |
| 5.1.1 实验地点及材料 | 第65页 |
| 5.1.2 材料培养与实验设计 | 第65-66页 |
| 5.1.3 13CO2的标记和13C含量的的测定 | 第66页 |
| 5.1.4 植物可利用水分含量的测定 | 第66页 |
| 5.1.5 植物叶片光合作用速率、气孔导度和叶片水势 | 第66页 |
| 5.1.6 花和荚败育计量 | 第66-67页 |
| 5.1.7 产量与产量形成因素的测定 | 第67页 |
| 5.1.8 数据分析 | 第67页 |
| 5.2 结果和分析 | 第67-76页 |
| 5.2.1 人工控水条件下山黧豆生长期变化 | 第67页 |
| 5.2.2 植株可利用水分含量和叶片水势变化 | 第67-68页 |
| 5.2.3 人工控水条件下山黧豆根源信号特征 | 第68-70页 |
| 5.2.4 人工控水条件下花、荚和种子形成和败育特征 | 第70-73页 |
| 5.2.5 人工控水条件下生物量积累与分配规律 | 第73-74页 |
| 5.2.6 人工控水条件下山黧豆产量形成特征 | 第74-75页 |
| 5.2.7 基于稳定碳同位素标记的碳同化与转移 | 第75-76页 |
| 5.3 讨论 | 第76-78页 |
| 5.3.1 根源信号调控下山黧豆的繁殖策略及毒素β-ODAP合成 | 第76-77页 |
| 5.3.2 干旱胁迫对碳同化作用的影响 | 第77-78页 |
| 第六章 主要结论和展望 | 第78-81页 |
| 6.1 主要结论 | 第78-79页 |
| 6.2 展望 | 第79-81页 |
| 参考文献 | 第81-90页 |
| 在读期间发表和待发表文章 | 第90-92页 |
| 基金项目资助 | 第92-93页 |
| 致谢 | 第93页 |
