摘要 | 第3-4页 |
ABSTRACT | 第4-5页 |
第1章 绪论 | 第9-25页 |
1.1 研究背景 | 第9-13页 |
1.1.1 生物质资源的有效利用有利于化解环境与能源危机 | 第9-10页 |
1.1.2 木质纤维素结构和微生物降解 | 第10-13页 |
1.2 分解木质纤维素复合菌系 | 第13-17页 |
1.2.1 木质纤维分解菌复合菌系研究背景 | 第13-15页 |
1.2.2 当前国内外研究进展 | 第15-16页 |
1.2.3 高通量测序技术 | 第16-17页 |
1.3 秸秆的厌氧发酵 | 第17-19页 |
1.3.1 分解木质纤维素复合菌系预处理秸秆的应用 | 第17-18页 |
1.3.2 腐败的青贮玉米秸秆 | 第18-19页 |
1.4 生物添加在厌氧发酵中的应用 | 第19-23页 |
1.4.1 厌氧发酵系统中的微生物平衡 | 第19-21页 |
1.4.2 生物添加在厌氧发酵中的应用探索 | 第21-23页 |
1.5 研究目标及内容 | 第23-25页 |
1.5.1 研究目标 | 第23页 |
1.5.2 研究内容 | 第23页 |
1.5.3 技术路线 | 第23-25页 |
第2章 复合菌系的形成过程分析 | 第25-46页 |
2.1 材料与方法 | 第25-27页 |
2.1.1 菌群的筛选 | 第25页 |
2.1.2 秸秆的预处理 | 第25页 |
2.1.3 秸秆减重测定 | 第25页 |
2.1.4 "酸碱组配"过程 | 第25-26页 |
2.1.5 基因组DNA的提取 | 第26页 |
2.1.6 MiSeq高通量测序 | 第26-27页 |
2.2 结果与分析 | 第27-45页 |
2.2.1 限制性培养中的菌群 | 第27-28页 |
2.2.2 溶液pH变化 | 第28-29页 |
2.2.3 秸秆减重 | 第29-30页 |
2.2.4 限制性培养和"酸碱组配"过程中细菌的菌群结构变化 | 第30-39页 |
2.2.5 限制性培养和"酸碱组配"过程中真菌的菌群结构变化 | 第39-43页 |
2.2.6 限制性培养"外淘汰"的机理 | 第43-44页 |
2.2.7 "酸碱组配"的机理 | 第44-45页 |
2.3 小结 | 第45-46页 |
第3章 不同底物、不同温度复合菌系菌群比较 | 第46-56页 |
3.1 材料与方法 | 第47-49页 |
3.1.1 活化与培养 | 第47页 |
3.1.2 取样和提取DNA | 第47-48页 |
3.1.3 MiSeq高通量测序和数据分析 | 第48-49页 |
3.2 结果 | 第49-53页 |
3.2.1 五种复合菌系的细菌菌群多样性 | 第49-51页 |
3.2.2 复合菌系中古菌和真菌的菌群多样性分析 | 第51页 |
3.2.3 温度和底物秸秆种类对复合菌系多样性的影响 | 第51-53页 |
3.3 讨论 | 第53-55页 |
3.3.1 复合菌系中菌群的多样性 | 第53-54页 |
3.3.2 温度、底物对复合菌系的菌群多样性的影响 | 第54页 |
3.3.3 高通量测序技术与DGGE、16SrDNA克隆文库的比较 | 第54-55页 |
3.4 小结 | 第55-56页 |
第4章 利用复合菌系预处理腐败的青贮玉米秸秆产甲烷 | 第56-65页 |
4.1 材料与方法 | 第56-59页 |
4.1.1 菌种的培养 | 第56页 |
4.1.2 腐败的青贮玉米秸秆和预处理条件 | 第56页 |
4.1.3 腐败的青贮玉米秸秆减重 | 第56页 |
4.1.4 粗酶的提取和酶活力的测定 | 第56-57页 |
4.1.5 发酵液中挥发性有机酸的测定 | 第57页 |
4.1.6 菌群结构变化的分析 | 第57页 |
4.1.7 MC1中5种关键菌株的数量比例的分析 | 第57-58页 |
4.1.8 腐败青贮玉米秸秆的厌氧发酵 | 第58页 |
4.1.9 总固体含量和挥发性固体含量的测定 | 第58-59页 |
4.1.10 沼气产量的测定 | 第59页 |
4.2 结果与讨论 | 第59-64页 |
4.2.1 复合菌系MC1处理腐败青贮玉米秸秆的过程 | 第59-61页 |
4.2.2 MC1抵抗RSMS携带杂菌的影响 | 第61-62页 |
4.2.3 MC1预处理提高沼气产率 | 第62-63页 |
4.2.4 复合菌系MC1预处理的特点 | 第63-64页 |
4.3 结论 | 第64-65页 |
第5章 利用复合菌系培养产甲烷菌做厌氧发酵生物添加剂 | 第65-75页 |
5.1 材料与方法 | 第65-68页 |
5.1.1 实验设计 | 第65页 |
5.1.2 水稻秸秆的预处理 | 第65页 |
5.1.3 菌种和培养条件 | 第65-66页 |
5.1.4 pH的测定 | 第66页 |
5.1.5 总固体含量及挥发性固体含量的测定 | 第66页 |
5.1.6 可溶性化学需氧量的测量方法 | 第66页 |
5.1.7 复合菌系基因组DNA提取 | 第66页 |
5.1.8 两种产甲烷菌的定量分析 | 第66-67页 |
5.1.9 厌氧发酵酸败体系 | 第67页 |
5.1.10 厌氧发酵的生物添加剂的制备 | 第67-68页 |
5.1.11 沼气产量的测定 | 第68页 |
5.2 结果 | 第68-72页 |
5.2.1 复合菌系MC1培养产甲烷古菌 | 第68-69页 |
5.2.2 复合菌系培养产甲烷菌做厌氧发酵生物添加剂的效果 | 第69-72页 |
5.3 讨论 | 第72-74页 |
5.3.1 复合菌系为产甲烷菌的生长提供必要的条件 | 第72-73页 |
5.3.2 利用复合菌系制作厌氧发酵生物添加剂的优势 | 第73页 |
5.3.3 两组生物添加的效果比较 | 第73-74页 |
5.4 结论 | 第74-75页 |
第6章 综合讨论与展望 | 第75-79页 |
6.1 综合讨论 | 第75-76页 |
6.2 创新点 | 第76页 |
6.3 展望 | 第76-79页 |
参考文献 | 第79-91页 |
致谢 | 第91-93页 |
个人简介 | 第93-94页 |