| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-7页 |
| 第一章 前言综述 | 第11-33页 |
| 1.1 两优培九的光合特性研究 | 第11-12页 |
| 1.1.1 株型特征 | 第11-12页 |
| 1.1.2 光合特征 | 第12页 |
| 1.1.3 抗性生理 | 第12页 |
| 1.2 作物叶片衰老的光合性能变化 | 第12-16页 |
| 1.2.1 作物叶片衰老表现的光合性状 | 第13-14页 |
| 1.2.2 光合机构在作物叶片衰老中的策略选择 | 第14-16页 |
| 1.3 叶绿素荧光技术在作物衰老进程中的应用 | 第16-23页 |
| 1.3.1 荧光动力学的原理及意义 | 第17-18页 |
| 1.3.2 荧光动力学的特征位点 | 第18-20页 |
| 1.3.3 JIP-test及其相应参数 | 第20-23页 |
| 1.3.4 PSⅡ受体侧、反应中心和供体侧研究 | 第23页 |
| 1.4 温和蓝绿胶技术在作物光合膜蛋白质复合物分析中应用 | 第23-31页 |
| 1.4.1 温和蓝绿胶技术 | 第23-25页 |
| 1.4.2 类囊体膜上的主要蛋白复合物 | 第25-31页 |
| 1.5 衰老蛋白质组学研究 | 第31-32页 |
| 1.6 本研究的内容和目标 | 第32-33页 |
| 第二章 “两优培九”剑叶衰老过程光合作用与叶绿素荧光变化特性 | 第33-48页 |
| 2.1 材料与方法 | 第33-37页 |
| 2.1.1 实验材料 | 第33页 |
| 2.1.2 光合性能测定 | 第33-34页 |
| 2.1.3 叶绿素荧光参数测定及JIP-Test | 第34页 |
| 2.1.4 数据处理 | 第34-37页 |
| 2.2 结果与分析 | 第37-44页 |
| 2.2.1 两优培九衰老进程中光合作用参数的变化特性 | 第37-38页 |
| 2.2.2 两优培九衰老进程中PS Ⅱ供体侧与受体侧的变化 | 第38-39页 |
| 2.2.3 两优培九衰老进程中PS Ⅱ反应中心和活性反应中心数的变化 | 第39-40页 |
| 2.2.4 两优培九衰老进程中PS Ⅱ反应中心能流分配的变化 | 第40-42页 |
| 2.2.5 两优培九衰老进程中PS Ⅱ性能指数的变化 | 第42-43页 |
| 2.2.6 衰老过程中剑叶叶绿素荧光动力学曲线 | 第43-44页 |
| 2.3 讨论 | 第44-46页 |
| 2.4 结论 | 第46-48页 |
| 第三章 “两优培九”剑叶衰老进程类囊体膜蛋白复合物及各亚基变化特性 | 第48-71页 |
| 3.1 材料与方法 | 第49-58页 |
| 3.1.1 叶片叶绿素含量测定 | 第49页 |
| 3.1.2 类囊体膜电子传递活性测定 | 第49-50页 |
| 3.1.3 Ca~(2+)/Mg~(2+)+-ATPase活性的测定 | 第50-51页 |
| 3.1.4 提取完整叶绿体 | 第51-52页 |
| 3.1.5 类囊体膜蛋白样品的处理 | 第52页 |
| 3.1.6 Blue-native聚丙烯酰胺梯度凝胶电泳 | 第52-54页 |
| 3.1.7 二向SDS-Urea-PAGE | 第54-55页 |
| 3.1.8 类囊体膜蛋白复合体亚基的免疫探测 | 第55-56页 |
| 3.1.9 水稻光合相关基因RT-PCR | 第56-57页 |
| 3.1.10 叶绿体超微结构观察 | 第57-58页 |
| 3.2 结果与分析 | 第58-68页 |
| 3.2.1 衰老进程中PSⅠ和PSⅡ电子传递活力的变化特性 | 第58-59页 |
| 3.2.2 衰老进程中Ca~(2+)-ATPase and Mg~(2+)-ATPase活力的变化特性 | 第59页 |
| 3.2.3 衰老进程中类囊体膜蛋白质复合物的变化特性 | 第59-64页 |
| 3.2.4 衰老进程中类囊体膜蛋白质复合物各亚基的变化特性 | 第64-66页 |
| 3.2.5 衰老进程中相关基因mRNA转录水平的变化特性 | 第66-67页 |
| 3.2.6 衰老进程中叶绿体超微结构的变化特性 | 第67-68页 |
| 3.3 讨论 | 第68-70页 |
| 3.4 结论 | 第70-71页 |
| 第四章 两优培九剑叶衰老进程中暗反应关键酶变化特性 | 第71-84页 |
| 4.1 材料与方法 | 第71-76页 |
| 4.1.1 酶液的制备 | 第71-72页 |
| 4.1.2 RubisCO活性的测定 | 第72页 |
| 4.1.3 RubisCO活化酶(RCA)活性测定 | 第72-73页 |
| 4.1.4 PEPC活性的测定 | 第73页 |
| 4.1.5 PEPCK活性的测定 | 第73-74页 |
| 4.1.6 PPDK活性的测定 | 第74-75页 |
| 4.1.7 NADP-ME活性的测定 | 第75页 |
| 4.1.8 NADP-MDH活性的测定 | 第75页 |
| 4.1.9 暗反应关键酶的免疫探测 | 第75页 |
| 4.1.10 暗反应相关基因的mRNA转录水平 | 第75-76页 |
| 4.2 结果与分析 | 第76-80页 |
| 4.2.1 两优培九衰老进程中C3酶和C4酶的变化特性 | 第76-78页 |
| 4.2.2 两优培九衰老进程中暗反应酶相关基因mRNA转录水平 | 第78-80页 |
| 4.2.3 两优培九衰老进程中暗反应酶变化特性 | 第80页 |
| 4.3 讨论 | 第80-82页 |
| 4.4 结论 | 第82-84页 |
| 第五章 剑叶衰老期间酶类抗氧化物与非酶类抗氧化剂变化特性 | 第84-97页 |
| 5.1 材料与方法 | 第84-88页 |
| 5.1.1 抗氧化酶的测定 | 第84-86页 |
| 5.1.2 非酶类的抗氧化物的测定 | 第86页 |
| 5.1.3 氧化类物质的测定 | 第86-87页 |
| 5.1.4 O_2~-·和H_2O_2的组织化学定位 | 第87页 |
| 5.1.5 抗氧化酶相关基因的mRNA转录水平 | 第87-88页 |
| 5.1.6 Cat序列基因分析 | 第88页 |
| 5.2 结果与分析 | 第88-94页 |
| 5.2.1 两优培九剑叶衰老进程中H_2O_2和O_2~-·变化特性 | 第88-90页 |
| 5.2.2 两优培九剑叶衰老进程中非酶类抗氧化物质的变化特性 | 第90-91页 |
| 5.2.3 两优培九剑叶衰老进程中抗氧化酶类的变化特性 | 第91-94页 |
| 5.3 讨论 | 第94-96页 |
| 5.4 结论 | 第96-97页 |
| 第六章 两优培九衰老进程中剑叶差异蛋白组学分析 | 第97-114页 |
| 6.1 材料与方法 | 第97-103页 |
| 6.1.1 材料的选取 | 第97页 |
| 6.1.2 蛋白质提取 | 第97-98页 |
| 6.1.3 蛋白含量测定 | 第98页 |
| 6.1.4 二维电泳 | 第98-102页 |
| 6.1.5 切胶 | 第102页 |
| 6.1.6 质谱鉴定 | 第102-103页 |
| 6.1.7 蛋白质检索 | 第103页 |
| 6.2 结果与分析 | 第103-111页 |
| 6.2.1 蛋白表达谱的变化 | 第103-109页 |
| 6.2.2 差异蛋白的鉴定和功能分类 | 第109-110页 |
| 6.2.3 差异蛋白的分析 | 第110-111页 |
| 6.3 讨论 | 第111-112页 |
| 6.4 结论 | 第112-114页 |
| 全文总结 | 第114-116页 |
| 参考文献 | 第116-138页 |
| 在读期间发表的学术论文及研究成果 | 第138-139页 |
| 致谢 | 第139页 |
